| 内容提要 | 第1-9页 |
| 英文缩略语 | 第9-10页 |
| 第1章 前言 | 第10-12页 |
| 第2章 文献综述 | 第12-18页 |
| 1 SDF-1 的结构与表达 | 第12-13页 |
| 2 CXCR4 结构与表达 | 第13页 |
| 3 SDF-1/CXCR4 轴的生物学功能 | 第13-14页 |
| 4 SDF-1/CXCR4 轴与新生血管形成 | 第14-16页 |
| 5 SDF-1/CXCR4 轴与缺血性视网膜病变 | 第16-17页 |
| 6 展望 | 第17-18页 |
| 第3章 实验研究 | 第18-56页 |
| 第1部分 SDF-1α 和 VEGF 在增殖性糖尿病视网膜病变继发新生血管性青光眼中的作用探讨 | 第18-29页 |
| 1 材料和方法 | 第19-25页 |
| ·标本的来源和收集 | 第19页 |
| ·材料 | 第19-20页 |
| ·方法 | 第20-25页 |
| 2 结果 | 第25-26页 |
| ·SDF-1α和VEGF 在体外血管形成中的作用 | 第25页 |
| ·SDF-1α对HUVECs 增殖的作用 | 第25页 |
| ·玻璃体中VEGF 和 SDF-1α含量测定 | 第25页 |
| ·玻璃体中VEGF 和 SDF-1α含量相关性分析 | 第25-26页 |
| 3 讨论 | 第26-28页 |
| 4 结论 | 第28-29页 |
| 第2部分 增殖性糖尿病视网膜病变玻璃体 bevacizumab 和 VEGF 的含量分析 | 第29-37页 |
| 1 材料和方法 | 第30-33页 |
| ·标本的来源和收集 | 第30页 |
| ·材料 | 第30页 |
| ·方法 | 第30-33页 |
| 2 结果 | 第33-34页 |
| ·Bevacizumab 酶联免疫吸附试验（ELISA）标准曲线 | 第33页 |
| ·PDR 玻璃体中VEGF 浓度、bevacizumab 浓度与IVB 后时间的相关性 | 第33页 |
| ·PDR 玻璃体中bevacizumab 药代动力学参数 | 第33-34页 |
| 3 讨论 | 第34-36页 |
| 4 结论 | 第36-37页 |
| 第3部分 不同剂量 bevacizumab 玻璃体腔注射治疗缺血性视网膜病变继发虹膜新生血管及新生血管性青光眼疗效分析 | 第37-44页 |
| 1 材料和方法 | 第38-40页 |
| ·标本的来源及收集 | 第38-39页 |
| ·材料 | 第39页 |
| ·方法 | 第39-40页 |
| 2 结果 | 第40-41页 |
| ·IVB 之前前房水中VEGF 浓度比较 | 第40页 |
| ·NVG 组IVB 之前眼压与前房水中VEGF 浓度相关性 | 第40页 |
| ·不同剂量IVB 前后前房内VEGF 浓度和眼压比较 | 第40-41页 |
| 3 讨论 | 第41-43页 |
| 4 结论 | 第43-44页 |
| 第4部分 SDF-1α 在增殖性糖尿病视网膜病变继发新生血管性青光眼患者玻璃体腔注射 bevacizumab 治疗后的作用 | 第44-56页 |
| 1 材料和方法 | 第45-52页 |
| ·标本的来源和收集 | 第45-46页 |
| ·材料 | 第46页 |
| ·方法 | 第46-52页 |
| 2 结果 | 第52-53页 |
| ·体外HUVECs 毛细血管样结构形成检测结果 | 第52页 |
| ·BrdU 掺入法HUVECs 增殖检测结果 | 第52页 |
| ·玻璃体样本对HUVECs 增殖的作用 | 第52页 |
| ·玻璃体中VEGF 和 SDF-1α含量测定 | 第52-53页 |
| 3 讨论 | 第53-55页 |
| 4 结论 | 第55-56页 |
| 第4章 结论 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-71页 |
| 附图 | 第71-84页 |
| 攻博期间发表的论文及成果 | 第84-85页 |
| 致谢 | 第85-86页 |
| 中文摘要 | 第86-91页 |
| ABSTRACT | 第91-95页 |
