| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 文中缩略词 | 第7-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-24页 |
| 1.1 韧皮部装载研究进展 | 第10-18页 |
| 1.1.1 韧皮部装载的主要路径 | 第10-12页 |
| 1.1.2 韧皮部装载过程的研究进展 | 第12-14页 |
| 1.1.3 韧皮部装载过程的调控 | 第14-18页 |
| 1.2 肌醇半乳糖苷酶与聚合物陷阱模型 | 第18-20页 |
| 1.3 蔗糖转运蛋白在质外体装载中的作用 | 第20-23页 |
| 1.4 本研究的目的与意义 | 第23-24页 |
| 第二章 材料与方法 | 第24-41页 |
| 2.1 实验材料及试剂 | 第24-25页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第24页 |
| 2.1.2 主要载体和菌株 | 第24页 |
| 2.1.3 主要实验试剂 | 第24-25页 |
| 2.2 实验仪器 | 第25页 |
| 2.3 常用的培养基配制 | 第25-26页 |
| 2.4 实验方法 | 第26-41页 |
| 2.4.1 植物材料的培养及处理 | 第26页 |
| 2.4.2 黄瓜基因的克隆 | 第26-31页 |
| 2.4.3 黄瓜原生质体转化 | 第31-32页 |
| 2.4.4 基因枪轰击洋葱表皮细胞 | 第32-33页 |
| 2.4.5 干扰载体的构建 | 第33页 |
| 2.4.6 黄瓜遗传转化及植株鉴定 | 第33-34页 |
| 2.4.7 qRT-PCR | 第34-36页 |
| 2.4.8 组织化学定位 | 第36-37页 |
| 2.4.9 蛋白质免疫印迹实验 | 第37-38页 |
| 2.4.10 碳水化合物的提取和测定 | 第38-39页 |
| 2.4.11 淀粉染色 | 第39页 |
| 2.4.12 同位素14C标记试验及检测 | 第39页 |
| 2.4.13 硅胶薄层层析试验 | 第39页 |
| 2.4.14 超薄切片的制备及电镜结构观察 | 第39-41页 |
| 第三章 结果 | 第41-67页 |
| 3.1 黄瓜不同级别叶脉的解剖结构观察 | 第41-43页 |
| 3.2 CsGolSs基因克隆与功能分析 | 第43-54页 |
| 3.2.1 CsGolSs的克隆和表达分析 | 第43-46页 |
| 3.2.2 CsGolS1抗体的制备和免疫组织化学定位 | 第46-47页 |
| 3.2.3 CsGolS1-GFP载体构建和CsGo1S1的亚细胞定位 | 第47-48页 |
| 3.2.4 CsGolS1的功能验证 | 第48-54页 |
| 3.3 CsSUT2克隆及功能分析 | 第54-67页 |
| 3.3.1 CsSUT2克隆及表达分析 | 第54-55页 |
| 3.3.2 CsSUT2抗体的制备和免疫组织化学定位 | 第55-59页 |
| 3.3.3 CsSUT2-GFP载体构建和CsSUT2的亚细胞定位 | 第59页 |
| 3.3.4 CsSUT2的功能验证 | 第59-67页 |
| 第四章 讨论 | 第67-73页 |
| 4.1 混合装载策略的解剖结构特性 | 第67-68页 |
| 4.2 黄瓜的韧皮部装载主要依赖棉子糖系列寡糖的合成 | 第68-69页 |
| 4.3 抑制CsSUT2会影响黄瓜叶片的装载 | 第69-73页 |
| 第五章 结论 | 第73-74页 |
| 参考文献 | 第74-85页 |
| 致谢 | 第85-86页 |
| 个人简介 | 第86-87页 |
