| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 1 前言 | 第10-25页 |
| 1.1 天然橡胶研究现状概述 | 第10页 |
| 1.2 天然橡胶的生物合成机制 | 第10-15页 |
| 1.2.1 甲羟戊酸(MVA)途径 | 第11-12页 |
| 1.2.2 2-C-甲基-D-赤藓糖醇-4-磷酸(MEP)途径 | 第12页 |
| 1.2.3 天然橡胶生物合成关联酶基因的研究现状 | 第12-15页 |
| 1.3 外源激素对天然橡胶生物合成的影响 | 第15-16页 |
| 1.3.1 乙烯在天然橡胶生物合成中的作用机制 | 第15-16页 |
| 1.3.2 茉莉酸对天然橡胶生物合成的调控机制 | 第16页 |
| 1.4 MYB转录因子研究进展 | 第16-22页 |
| 1.4.1 MYB转录因子的结构特点及分类 | 第18-19页 |
| 1.4.2 MYB转录因子家族的进化 | 第19-20页 |
| 1.4.3 MYB转录因子的生物学功能 | 第20-22页 |
| 1.4.4 MYB类转录因子的作用机制 | 第22页 |
| 1.5 研究目的和意义 | 第22-24页 |
| 1.6 技术路线 | 第24-25页 |
| 2 材料与方法 | 第25-36页 |
| 2.1 材料与试剂 | 第25-26页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第25页 |
| 2.1.2 试剂及仪器 | 第25-26页 |
| 2.2 方法与步骤 | 第26-36页 |
| 2.2.1 HblMYBs基因生物信息学分析 | 第26页 |
| 2.2.2 HblMYBs基因组织特异性表达分析 | 第26-28页 |
| 2.2.3 MeJA、ABA、SA和ET处理对HbMYBs基因表达量的影响 | 第28-29页 |
| 2.2.4 HblMYBs基因的克隆 | 第29-31页 |
| 2.2.5 HblMYBs基因核定位分析 | 第31-33页 |
| 2.2.6 HblMYB44的原核表达分析 | 第33页 |
| 2.2.7 橡胶生物合成关键酶基因启动子顺式作用元件预测 | 第33页 |
| 2.2.8 HblMYB44与橡胶生物合成关键酶基因启动子的互作 | 第33-35页 |
| 2.2.9 双荧光素酶含量的测定 | 第35-36页 |
| 3 结果与分析 | 第36-53页 |
| 3.1 HblMYBs基因生物信息学分析 | 第36-41页 |
| 3.1.1 HblMYBs基因理化特性分析 | 第36-37页 |
| 3.1.2 HblMYBs结构及同源性分析 | 第37-38页 |
| 3.1.3 HblMYBs蛋白的保守结构域分析 | 第38-40页 |
| 3.1.4 HblMYBs进化分析 | 第40-41页 |
| 3.2 HblMYBs组织特异性表达分析 | 第41-44页 |
| 3.2.1 不同组织RNA的提取与检测 | 第41-42页 |
| 3.2.2 HblMYBs组织特异性分析 | 第42-44页 |
| 3.3 激素处理对HblMYBs表达的影响 | 第44-45页 |
| 3.4 HblMYBs克隆 | 第45页 |
| 3.5 HblMYBs的亚细胞定位 | 第45-47页 |
| 3.6 HblMYB44的原核表达分析 | 第47-50页 |
| 3.7 天然橡胶生物合成关联酶基因启动子顺式作用元件预测 | 第50页 |
| 3.8 HblMYB44与橡胶生物合成关键酶基因启动子的相互作用 | 第50-51页 |
| 3.9 HblMYB44与天然橡胶关键酶基因启动子间的调控关系 | 第51-53页 |
| 4 讨论 | 第53-56页 |
| 4.1 巴西橡胶树HblMYBs基因家族分析 | 第53-54页 |
| 4.2 HblMYBs基因的表达分析 | 第54-55页 |
| 4.3 HblMYB与天然橡胶生物合成关联酶基因启动子的结合分析 | 第55-56页 |
| 5 结论 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-66页 |
| 附录 | 第66-70页 |
| 在读期间参与的科研简介 | 第70-71页 |
| 致谢 | 第71页 |
