| 致谢 | 第4-11页 |
| 摘要 | 第11-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-43页 |
| 1 作物抗旱机制的形态指标研究进展 | 第13-14页 |
| 1.1 水分胁迫对作物叶片生长的影响 | 第13-14页 |
| 1.2 水分胁迫对作物根系生长的影响 | 第14页 |
| 2 作物抗旱机制的生理学研究进展 | 第14-20页 |
| 2.1 作物水分状况研究 | 第14-15页 |
| 2.2 作物抗旱性与渗透调节的相关研究 | 第15-17页 |
| 2.2.1 脯氨酸 | 第15-16页 |
| 2.2.2 甜菜碱 | 第16页 |
| 2.2.3 K+和其他无机离子 | 第16-17页 |
| 2.2.4 其他渗透调节物质 | 第17页 |
| 2.3 作物抗旱性与光合作用的相关研究 | 第17-19页 |
| 2.3.1 水分胁迫对光合速率的影响 | 第17-18页 |
| 2.3.2 水分胁迫对叶绿素含量的影响 | 第18页 |
| 2.3.3 水分胁迫对气孔行为的影响 | 第18-19页 |
| 2.4 作物抗旱性与抗氧化体系的相关研究 | 第19-20页 |
| 2.4.1 酶促抗氧化清除系统 | 第19页 |
| 2.4.2 非酶促抗氧化清除系统 | 第19-20页 |
| 2.5 作物抗旱性与植物激素的调控研究 | 第20页 |
| 3 作物抗旱机制的分子生物学研究进展 | 第20-29页 |
| 3.1 功能蛋白和渗透调节因子 | 第21-23页 |
| 3.1.1 LEA蛋白 | 第21页 |
| 3.1.2 水孔蛋白 | 第21-22页 |
| 3.1.3 脯氨酸及其合成基因 | 第22页 |
| 3.1.4 季铵类化合物及其合成的相关基因 | 第22页 |
| 3.1.5 与毒性降解、抗氧化防御能力有关的酶基因 | 第22-23页 |
| 3.2 信号转导和转录因子 | 第23-26页 |
| 3.2.1 水分胁迫信号的感知 | 第23-24页 |
| 3.2.2 胞间信使的转导 | 第24页 |
| 3.2.3 水分胁迫诱导的基因表达及转录调控 | 第24-26页 |
| 3.2.4 水分胁迫诱导的基因转录后调控及交互作用 | 第26页 |
| 3.3 microRNA(miRNA)在干旱响应中的相关研究 | 第26-29页 |
| 3.3.1 miRNA的生物合成 | 第27页 |
| 3.3.2 miRNA的作用方式 | 第27-28页 |
| 3.3.3 miRNA与干旱胁迫 | 第28-29页 |
| 4 本课题研究的目的和意义 | 第29页 |
| 参考文献 | 第29-43页 |
| 第二章 小麦幼苗耐水分胁迫的基因型差异 | 第43-54页 |
| 1.引言 | 第43页 |
| 2.材料与方法 | 第43-45页 |
| 2.1 供试材料 | 第43页 |
| 2.2 材料培养 | 第43-44页 |
| 2.3 试验设计 | 第44页 |
| 2.4 测定项目及方法 | 第44-45页 |
| 2.4.1 幼苗的根系形态及植株生物量的测定 | 第44页 |
| 2.4.2 叶片相对含水量 | 第44页 |
| 2.4.3 叶绿素总含量 | 第44页 |
| 2.4.4 可溶性蛋白含量 | 第44-45页 |
| 2.5 数据处理 | 第45页 |
| 3.结果分析 | 第45-50页 |
| 3.1 水分胁迫对不同基因型小麦地上部外观形态的影响 | 第45-46页 |
| 3.2 水分胁迫对不同基因型小麦根系外观形态的影响 | 第46-47页 |
| 3.3 水分胁迫对不同基因型小麦侧根生长和发育的影响 | 第47-48页 |
| 3.4 水分胁迫对不同基因型小麦叶片相对含水量的影响 | 第48页 |
| 3.5 水分胁迫对不同基因型小麦叶片总叶绿素含量的影响 | 第48-49页 |
| 3.6 水分胁迫对不同基因型小麦可溶性蛋白含量的影响 | 第49页 |
| 3.7 水分胁迫对不同基因型小麦根系活力的影响 | 第49-50页 |
| 4.结论与讨论 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-54页 |
| 第三章 水分胁迫对不同基因型小麦幼苗内源激素含量的影响 | 第54-62页 |
| 1.引言 | 第54页 |
| 2.材料与方法 | 第54-55页 |
| 2.1 供试材料 | 第54页 |
| 2.2 材料培养 | 第54页 |
| 2.3 试验设计 | 第54-55页 |
| 2.4 测定项目及方法 | 第55页 |
| 2.5 数据处理 | 第55页 |
| 3.结果分析 | 第55-58页 |
| 3.1 水分胁迫对不同基因型小麦ABA含量的影响 | 第55-56页 |
| 3.2 水分胁迫对不同基因型小麦IAA含量的影响 | 第56页 |
| 3.3 水分胁迫对不同基因型小麦GA含量的影响 | 第56-57页 |
| 3.4 水分胁迫对不同基因型小麦ZR含量的影响 | 第57-58页 |
| 4.结论与讨论 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-62页 |
| 第四章 水分胁迫对不同基因型小麦叶片解剖结构的影响 | 第62-71页 |
| 1.引言 | 第62页 |
| 2.材料与方法 | 第62-64页 |
| 2.1 供试材料 | 第62页 |
| 2.2 材料培养 | 第62页 |
| 2.3 试验设计 | 第62-63页 |
| 2.4 测定项目及方法 | 第63-64页 |
| 2.4.1 叶片的解剖结构 | 第63-64页 |
| 2.4.2 叶片的气孔状态 | 第64页 |
| 2.5 数据处理 | 第64页 |
| 3.结果分析 | 第64-68页 |
| 3.1 水分胁迫对不同基因型小麦叶片维管组织细胞分化的影响 | 第64-66页 |
| 3.2 水分胁迫对不同基因型小麦叶片维管组织细胞数目的影响 | 第66页 |
| 3.3 水分胁迫对不同基因型小麦叶片气孔运动的影响 | 第66-67页 |
| 3.4 水分胁迫对不同基因型小麦叶片气孔开放程度的影响 | 第67-68页 |
| 4.结论与讨论 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-71页 |
| 第五章 水分胁迫对不同基因型小麦幼苗抗氧化酶活性及相关基因表达的影响 | 第71-84页 |
| 1.引言 | 第71页 |
| 2.材料与方法 | 第71-75页 |
| 2.1 供试材料 | 第71页 |
| 2.2 材料培养 | 第71页 |
| 2.3 试验设计 | 第71-72页 |
| 2.4 测定项目及方法 | 第72-75页 |
| 2.4.1 H2O2含量的测定 | 第72页 |
| 2.4.2 O2-产生速率的测定 | 第72页 |
| 2.4.3 MDA含量测定 | 第72页 |
| 2.4.4 SOD活性测定 | 第72-73页 |
| 2.4.5 POD活性测定 | 第73页 |
| 2.4.6 CAT活性测定 | 第73页 |
| 2.4.7 TotalRNA的提取 | 第73-74页 |
| 2.4.8 反转录反应 | 第74页 |
| 2.4.9 引物 | 第74-75页 |
| 3.结果分析 | 第75-80页 |
| 3.1 水分胁迫对不同基因型小麦H2O2含量的影响 | 第75页 |
| 3.2 水分胁迫对不同基因型小麦O2-产生速率的影响 | 第75-76页 |
| 3.3 水分胁迫对不同基因型小麦MDA含量的影响 | 第76页 |
| 3.4 水分胁迫对不同基因型小麦SOD活性的影响 | 第76-77页 |
| 3.5 水分胁迫对不同基因型小麦POD活性的影响 | 第77页 |
| 3.6 水分胁迫对不同基因型小麦CAT活性的影响 | 第77-78页 |
| 3.7 水分胁迫对不同基因型小麦Cu-ZnSOD基因相对表达的影响 | 第78-79页 |
| 3.8 水分胁迫对不同基因型小麦POD基因相对表达的影响 | 第79页 |
| 3.9 水分胁迫对不同基因型小麦CAT基因相对表达的影响 | 第79-80页 |
| 4.结论与讨论 | 第80-81页 |
| 参考文献 | 第81-84页 |
| 第六章 水分胁迫下不同基因型小麦叶片差异表达miRNAs的鉴定和比较分析 | 第84-117页 |
| 1.引言 | 第84-85页 |
| 2.材料方法 | 第85页 |
| 2.1 供试材料 | 第85页 |
| 2.2 材料培养 | 第85页 |
| 2.3 试验设计 | 第85页 |
| 3.测定项目和方法 | 第85-93页 |
| 3.1 TotalRNA的提取 | 第85页 |
| 3.2 小RNA库的构建和测序 | 第85-88页 |
| 3.2.1 连接3'端接头 | 第85-86页 |
| 3.2.2 反转录引物退火 | 第86页 |
| 3.2.3 连接5'端接头 | 第86页 |
| 3.2.4 反转录 | 第86-87页 |
| 3.2.5 PCR扩增 | 第87页 |
| 3.2.6 PAGE凝胶电泳回收 | 第87页 |
| 3.2.7 切胶回收 | 第87-88页 |
| 3.2.8 上机测序 | 第88页 |
| 3.3 miRNAs的鉴定 | 第88页 |
| 3.4 差异表达miRNAs的筛选 | 第88-89页 |
| 3.5 miRNAs靶基因的预测和功能的注释 | 第89页 |
| 3.6 Poly(A)加尾反应和反转录反应 | 第89页 |
| 3.7 RealTimePCR反应(定量验证) | 第89-90页 |
| 3.8 miRNA的northern blot验证 | 第90-91页 |
| 3.8.1 TotalRNA的提取 | 第90页 |
| 3.8.2 上样及准备工作 | 第90页 |
| 3.8.3 杂交及检测 | 第90-91页 |
| 3.9 靶基因的定量验证 | 第91-92页 |
| 3.9.1 TotalRNA的提取 | 第91页 |
| 3.9.2 反转录反应 | 第91页 |
| 3.9.3 qPCR | 第91-92页 |
| 3.10 本试验中使用的所有引物 | 第92-93页 |
| 3.10.1 miRNAs引物 | 第92页 |
| 3.10.2 靶基因引物 | 第92-93页 |
| 4.结果分析 | 第93-107页 |
| 4.1 水分胁迫下不同基因型小麦sRNA高通量测序结果分析 | 第93-94页 |
| 4.2 水分胁迫下不同基因型小麦sRNA的注释 | 第94-96页 |
| 4.3 水分胁迫下不同基因型小麦中差异表达miRNAs的鉴定 | 第96-97页 |
| 4.4 水分胁迫下不同基因型小麦中差异表达miRNAs的比较 | 第97-100页 |
| 4.5 水分胁迫下不同基因型小麦新型miRNAs的鉴定和比较 | 第100-102页 |
| 4.6 差异表达miRNAs的qPCR验证 | 第102-104页 |
| 4.7 差异表达miRNAs的Northernblot验证 | 第104页 |
| 4.8 差异表达miRNAs靶基因的预测和功能的注释 | 第104-105页 |
| 4.9 差异表达miRNAs靶基因的qPCR验证 | 第105-107页 |
| 5.结论与讨论 | 第107-111页 |
| 参考文献 | 第111-117页 |
| 第七章 主要结论与创新点 | 第117-120页 |
| 7.1 主要结论 | 第117-118页 |
| 7.1.1 小麦幼苗耐水分胁迫的基因型差异 | 第117页 |
| 7.1.2 水分胁迫对不同基因型小麦幼苗内源激素含量的影响 | 第117页 |
| 7.1.3 水分胁迫对不同基因型小麦叶片维管组织发育和气孔行为的影响 | 第117-118页 |
| 7.1.4 水分胁迫对不同基因型小麦幼苗抗氧化酶活性及相关基因表达的影响 | 第118页 |
| 7.1.5 水分胁迫下不同基因型小麦叶片差异表达miRNAs的鉴定和比较分析 | 第118页 |
| 7.2 论文创新点 | 第118-120页 |
| 附录 | 第120-128页 |
| 英文摘要 | 第128-131页 |
