中文摘要 | 第4-7页 |
Abstract | 第7-9页 |
前言 | 第12-23页 |
研究现状、成果 | 第12-20页 |
研究目的、方法 | 第20-23页 |
一、表达APEs基因的转基因斑马鱼模型的构建 | 第23-53页 |
1.1 对象和方法 | 第23-31页 |
1.1.1 体外试验对象和方法 | 第23-27页 |
1.1.2 体内试验对象和方法 | 第27-31页 |
1.2 结果 | 第31-43页 |
1.2.1 APE1和APE2基因表达情况 | 第31-32页 |
1.2.2 APE1的蛋白表达情况 | 第32-33页 |
1.2.3 转染前后的成纤维细胞GM05756形态 | 第33-34页 |
1.2.4 转染后细胞生长曲线 | 第34页 |
1.2.5 核型分析结果 | 第34-36页 |
1.2.6 不同注射方式注射后荧光表达 | 第36-37页 |
1.2.7 注射后不同时间段的斑马鱼 | 第37-38页 |
1.2.8 基因鉴定 | 第38-41页 |
1.2.9 免疫组化 | 第41-42页 |
1.2.10 改装质粒后注射荧光图 | 第42-43页 |
1.3 讨论 | 第43-52页 |
1.4 小结 | 第52-53页 |
二、临床相关的斑马鱼多发性骨髓瘤体内模型的建立及初步应用 | 第53-71页 |
2.1 对象和方法 | 第53-57页 |
2.1.1 细胞培养材料和各种试剂 | 第53页 |
2.1.2 实验仪器 | 第53页 |
2.1.3 实验动物 | 第53-54页 |
2.1.4 细胞培养 | 第54页 |
2.1.5 鱼卵DNA的提取 | 第54-55页 |
2.1.6 细胞增殖能力检测(MTT法) | 第55页 |
2.1.7 试验药物 | 第55页 |
2.1.8 磁珠分选 | 第55-56页 |
2.1.9 斑马鱼全胚胎免疫组化染色 | 第56页 |
2.1.10 PCR反应 | 第56-57页 |
2.2 结果 | 第57-65页 |
2.2.1 不同视野下观察细胞注射情况 | 第57-58页 |
2.2.2 全鱼的IHC染色情况 | 第58页 |
2.2.3 PCR验证MM细胞的存在 | 第58-59页 |
2.2.4 应用MM1S和MM1R来评价该模型有效率 | 第59-60页 |
2.2.5 评价不同MM细胞系对不同药物的敏感程度 | 第60-62页 |
2.2.6 根据上述实验确定该模型敏感范围 | 第62页 |
2.2.7 患者体内药敏试验 | 第62-64页 |
2.2.8 新药的体内外药敏试验 | 第64-65页 |
2.3 讨论 | 第65-70页 |
2.4 小结 | 第70-71页 |
结论 | 第71-72页 |
论文创新点 | 第72-73页 |
参考文献 | 第73-79页 |
综述 | 第79-85页 |
综述参考文献 | 第83-85页 |
致谢 | 第85-86页 |
个人简历 | 第86页 |