| 中文摘要 | 第4-9页 |
| abstract | 第9-14页 |
| 引言 | 第18-20页 |
| 第一部分 抗PDPN单抗的体外生物学功能研究 | 第20-29页 |
| 1 实验材料和试剂 | 第20-22页 |
| 1.1 细胞系 | 第20页 |
| 1.2 实验试剂 | 第20-21页 |
| 1.3 实验仪器和设备 | 第21-22页 |
| 1.4 常用缓冲液 | 第22页 |
| 2 实验方法和步骤 | 第22-25页 |
| 2.0 DMEM和RPMI1640完全培养基的配置 | 第22页 |
| 2.1 细胞培养 | 第22-23页 |
| 2.2 流式细胞术(FlowCytometricAnalysis) | 第23页 |
| 2.3 蛋白质免疫印迹实验(Westernblot) | 第23-24页 |
| 2.4 血小板聚集试验检测体外肿瘤细胞与血小板聚集 | 第24-25页 |
| 3 统计学分析 | 第25页 |
| 4 实验结果 | 第25-27页 |
| 4.1 PDPN的人肿瘤细胞株的筛选 | 第25-26页 |
| 4.2 SZ168抑制人肿瘤细胞诱导的血小板聚集 | 第26-27页 |
| 5 讨论 | 第27-29页 |
| 第二部分 抗PDPN单抗SZ168的体内生物学功能研究 | 第29-40页 |
| 1 实验材料和试剂 | 第29-31页 |
| 1.1 细胞系和实验动物 | 第29-30页 |
| 1.2 实验试剂 | 第30页 |
| 1.3 实验仪器和设备 | 第30-31页 |
| 2 实验方法和步骤 | 第31-33页 |
| 2.1 建立实验性裸鼠CHO/hPDPN肺转移模型 | 第31页 |
| 2.2 HE染色 | 第31-32页 |
| 2.3 免疫组织化学染色(IHC) | 第32页 |
| 2.4 建立裸鼠CHO/hPDPN原位肿瘤模型 | 第32-33页 |
| 2.5 建立裸鼠人黑色素瘤C8161原位肿瘤模型 | 第33页 |
| 3 统计学分析 | 第33页 |
| 4 结果 | 第33-38页 |
| 4.1 SZ168在体内抑制了自发性的肺转移 | 第33-35页 |
| 4.2 .SZ168抑制CHO/hPDPN裸鼠原位移植瘤的生长 | 第35-36页 |
| 4.3 SZ168在C8161原位移植瘤中的抗肿瘤作用 | 第36-38页 |
| 5 讨论 | 第38-40页 |
| 第三部分 可溶性PDPN检测在乳腺癌诊疗中的临床应用研究 | 第40-49页 |
| 1 材料与方法 | 第40-41页 |
| 1.1 一般临床资料 | 第40-41页 |
| 1.2 实验材料 | 第41页 |
| 1.3 实验材料与仪器 | 第41页 |
| 1.4 主要缓冲液 | 第41页 |
| 2 实验方法 | 第41-42页 |
| 2.1 标本采集及处理 | 第41-42页 |
| 2.2 检测标本中sPDPN的含量 | 第42页 |
| 3 统计学分析 | 第42-43页 |
| 4 结果 | 第43-47页 |
| 4.1 标准曲线的绘制 | 第43页 |
| 4.2 乳腺癌组、乳腺纤维腺瘤组及健康对照组血浆中sPDPN的含量 | 第43-44页 |
| 4.3 乳腺癌患者血浆中sPDPN的含量与其临床病理参数的相关性 | 第44-46页 |
| 4.4 乳腺癌sPDPN及其相关肿瘤标志物的诊断效能评估 | 第46-47页 |
| 4.5 sPDPN对乳腺癌的预测价值 | 第47页 |
| 5 讨论 | 第47-49页 |
| 结论 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-53页 |
| 血小板新型活化受体CLEC-2和平足蛋白在肿瘤转移中的研究进展 | 第53-62页 |
| 参考文献 | 第59-62页 |
| 攻读学位期间发表的论文及基金参与情况 | 第62-63页 |
| 中英文缩写词表 | 第63-64页 |
| 致谢 | 第64-66页 |
