| 摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-12页 |
| 符号缩写 | 第13-15页 |
| 文献综述 | 第15-35页 |
| 一、变应性鼻炎(AR)现代医学研究概况 | 第15-17页 |
| 1、变应性鼻炎症状 | 第15页 |
| 2、变应性鼻炎病因 | 第15-16页 |
| 3、变应性鼻炎诊断 | 第16页 |
| 4、变应性鼻炎治疗 | 第16-17页 |
| 二、变应性鼻炎发病机制 | 第17-23页 |
| 1、变应性鼻炎经典发病机制 | 第17-18页 |
| 2、变应性鼻炎现代发病机制 | 第18-23页 |
| 三、中医对变应性鼻炎的研究 | 第23-25页 |
| 1、变应性鼻炎病名的认识和沿革 | 第23-24页 |
| 2、变应性鼻炎的病因病机 | 第24页 |
| 3.传统变应性鼻炎治疗 | 第24-25页 |
| 四、小青龙汤治疗变应性鼻炎的研究 | 第25-28页 |
| 1、小青龙汤治疗变应性鼻炎理论依据 | 第26页 |
| 2、小青龙汤治疗变应性鼻炎临床依据 | 第26页 |
| 3、小青龙汤治疗变应性鼻炎实验依据 | 第26-27页 |
| 4、前期工作基础 | 第27-28页 |
| 参考文献 | 第28-35页 |
| 第一部分 DCS培养的实验研究 | 第35-53页 |
| 实验一 小鼠骨髓源性树突细胞和脾源性树突细胞的形态及生物学性能对比 | 第35-45页 |
| 前言 | 第35页 |
| 1. 材料和方法 | 第35-37页 |
| 1.1 动物 | 第35页 |
| 1.2 试剂与设备 | 第35-36页 |
| 1.3 小鼠骨髓源性DCs的分离与培养 | 第36页 |
| 1.4 小鼠脾源性DCs的分离与培养 | 第36页 |
| 1.5 镜下观察DCs形态 | 第36-37页 |
| 1.6 FCM检测CD83的表达 | 第37页 |
| 1.7 ELISA检测IL-12的表达 | 第37页 |
| 1.8 统计学分析 | 第37页 |
| 2. 结果 | 第37-42页 |
| 3. 讨论 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-45页 |
| 实验二 小鼠骨髓源性树突细胞的体外培养及其生物学特性鉴定 | 第45-53页 |
| 前言 | 第45页 |
| 1. 材料和方法 | 第45-47页 |
| 1.1 动物 | 第45页 |
| 1.2 试剂与设备 | 第45-46页 |
| 1.3 小鼠DCs的分离与培养 | 第46页 |
| 1.4 FCM检测CD86和MHC Ⅱ的表达 | 第46页 |
| 1.5 镜下观察DCs形态 | 第46页 |
| 1.6 ELISA检测IL-12,IL-10表达 | 第46-47页 |
| 1.7 MLR实验 | 第47页 |
| 1.8 统计学分析 | 第47页 |
| 2. 结果 | 第47-50页 |
| 3. 讨论 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-53页 |
| 第二部分 小青龙汤干预TSLP刺激DCs | 第53-94页 |
| 实验一 小青龙汤体外干预小鼠TSLP刺激DCs后CD86、IL-13的表达变化 | 第53-62页 |
| 前言 | 第53页 |
| 1. 材料和方法 | 第53-55页 |
| 1.1 动物 | 第53页 |
| 1.2 试剂与设备 | 第53-54页 |
| 1.3 小鼠DCs的分离与培养 | 第54页 |
| 1.4 CCK8筛选小青龙汤对DCs的干预浓度 | 第54页 |
| 1.5 不同浓度的TSLP刺激DCs后CD86、IL-13的表达 | 第54页 |
| 1.6 小青龙汤干预TSLP刺激DCs后CD86、IL-13的表达 | 第54-55页 |
| 1.7 统计学分析 | 第55页 |
| 2. 结果 | 第55-59页 |
| 3. 讨论 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-62页 |
| 实验二 小青龙汤体外干预小鼠TSLP刺激DCs后P-JAKI、P-JAK3、P-STAT5、P-STAT6的表达变化 | 第62-72页 |
| 前言 | 第62页 |
| 1. 材料和方法 | 第62-67页 |
| 1.1 动物 | 第62页 |
| 1.2 试剂与设备 | 第62-63页 |
| 1.3 小鼠DCs的分离与培养 | 第63页 |
| 1.4 细胞分组 | 第63-64页 |
| 1.5 Western检测因子的表达 | 第64-66页 |
| 1.6 BCA测蛋白含量 | 第66-67页 |
| 1.7 统计学方法 | 第67页 |
| 2. 结果 | 第67-69页 |
| 3. 讨论 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-72页 |
| 实验三 小青龙汤体外干预小鼠TSLP刺激DCs后OX40L及OX40LmRNA的表达变化 | 第72-81页 |
| 前言 | 第72页 |
| 1. 材料和方法 | 第72-76页 |
| 1.1 动物 | 第72页 |
| 1.2 试剂与设备 | 第72-73页 |
| 1.3 小鼠DCs的分离与培养 | 第73页 |
| 1.4 细胞分组 | 第73页 |
| 1.5 Western检测OX40L的表达 | 第73页 |
| 1.6 BCA检测蛋白含量 | 第73页 |
| 1.7 RT-PCR检测OX40LmRNA的表达 | 第73-76页 |
| 1.8 统计学方法 | 第76页 |
| 2. 结果 | 第76-78页 |
| 3. 讨论 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-81页 |
| 实验四 小青龙汤体外干预小鼠TSLP刺激DCs后CCL17、CCL22、IP-10的表达变化 | 第81-94页 |
| 前言 | 第81页 |
| 1. 材料和方法 | 第81-86页 |
| 1.1 动物 | 第81页 |
| 1.2 试剂与设备 | 第81-82页 |
| 1.3 小鼠DCs的分离与培养 | 第82页 |
| 1.4 细胞分组 | 第82页 |
| 1.5 ELISA检测CCL17、CCL22、IP-10的表达 | 第82-83页 |
| 1.6 RT-PCR检测CCL 17mRNA,CCL22 mRNA的表达 | 第83-86页 |
| 1.7 统计学方法 | 第86页 |
| 2. 结果 | 第86-90页 |
| 3. 讨论 | 第90-91页 |
| 参考文献 | 第91-94页 |
| 第三部分 小青龙汤干预TSLP刺激DCs-Th0体系 | 第94-102页 |
| 小青龙汤对GATA-3、C-Maf、T-bet的表达影响 | 第94-102页 |
| 前言 | 第94页 |
| 1. 材料和方法 | 第94-97页 |
| 1.1 动物 | 第94页 |
| 1.2 试剂与设备 | 第94-95页 |
| 1.3 小鼠DCs的分离与培养 | 第95页 |
| 1.4 磁珠分选CD4+ T细胞 | 第95-96页 |
| 1.5 RT-PCR检测因子的表达 | 第96页 |
| 1.6 统计学分析 | 第96-97页 |
| 2. 结果 | 第97-99页 |
| 3. 讨论 | 第99-100页 |
| 参考文献 | 第100-102页 |
| 结语 | 第102-105页 |
| 展望 | 第105-106页 |
| 致谢 | 第106-107页 |
| 在学期间研究成果 | 第107-108页 |
| 个人简历 | 第108页 |
