| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 目录 | 第6-10页 |
| 主要符号对照表 | 第10-11页 |
| 第1章 绪论 | 第11-29页 |
| 1.1 问题的提出 | 第11-12页 |
| 1.2 水环境中抗生素的分类、来源和影响 | 第12-15页 |
| 1.2.1 抗生素的种类及作用机理 | 第12-13页 |
| 1.2.2 水环境中抗生素的主要来源 | 第13页 |
| 1.2.3 抗生素对环境和人体健康的影响 | 第13-15页 |
| 1.3 污水处理过程的抗生素影响的相关研究 | 第15-21页 |
| 1.3.1 污水处理过程中抗生素的归趋研究 | 第15-18页 |
| 1.3.2 抗生素对活性污泥细菌影响的研究进展 | 第18-20页 |
| 1.3.3 污水中细菌的耐药性研究 | 第20-21页 |
| 1.4 微流控芯片及其在环境中的应用潜力 | 第21-26页 |
| 1.4.1 微流控芯片介绍 | 第21-22页 |
| 1.4.2 微流控芯片在细菌研究方面的应用 | 第22-25页 |
| 1.4.3 微流控芯片技术在环境中的应用 | 第25-26页 |
| 1.5 研究目标、内容和技术路线 | 第26-29页 |
| 1.5.1 已有研究的不足 | 第26-27页 |
| 1.5.2 研究目标 | 第27页 |
| 1.5.3 研究内容与技术路线 | 第27-29页 |
| 第2章 基于常规方法的抗生素对细菌的抑制特性研究 | 第29-50页 |
| 2.1 引言 | 第29页 |
| 2.2 实验材料与研究方法 | 第29-37页 |
| 2.2.1 目标抗生素 | 第29-30页 |
| 2.2.2 目标微生物 | 第30-32页 |
| 2.2.3 常用实验仪器 | 第32-33页 |
| 2.2.4 基于生长曲线的抑制实验 | 第33-36页 |
| 2.2.5 抗生素-微生物抑制动力学模型 | 第36-37页 |
| 2.3 抗生素对微生物生长过程的影响 | 第37-48页 |
| 2.3.1 抗生素对杆菌类微生物的抑制特性 | 第37-40页 |
| 2.3.2 抗生素对假单胞菌类微生物的抑制特性 | 第40-42页 |
| 2.3.3 抗生素对脱氮除磷微生物的抑制特性 | 第42-44页 |
| 2.3.4 抗生素对混合菌群生长的抑制特性 | 第44-47页 |
| 2.3.5 实验结果的分析与讨论 | 第47-48页 |
| 2.4 本章小结 | 第48-50页 |
| 第3章 微流控研究平台的建立与优化 | 第50-68页 |
| 3.1 引言 | 第50页 |
| 3.2 微流控平台的实验方法 | 第50-52页 |
| 3.2.1 微流控平台系统设计 | 第50-51页 |
| 3.2.2 微流控平台系统构建 | 第51-52页 |
| 3.3 微流控琼脂层芯片的结构设计制备与观测方法 | 第52-58页 |
| 3.3.1 单通道培养芯片 | 第52-53页 |
| 3.3.2 双通道浓度梯度芯片 | 第53页 |
| 3.3.3 微流控芯片制备方法 | 第53-56页 |
| 3.3.4 显微观察与图像获取 | 第56页 |
| 3.3.5 芯片内浓度梯度的表征 | 第56-58页 |
| 3.4 微流控平台实验条件优化 | 第58-64页 |
| 3.4.1 芯片结构优化 | 第58-61页 |
| 3.4.2 通道内流速优化 | 第61-63页 |
| 3.4.3 其他改进的措施 | 第63-64页 |
| 3.5 基于单细胞追踪的细菌观测方法 | 第64-66页 |
| 3.5.1 图像处理及细菌量的表征方法 | 第64页 |
| 3.5.2 微生物的计数与生长模型 | 第64-65页 |
| 3.5.3 芯片上微生物生长曲线的观测结果 | 第65-66页 |
| 3.6 本章小结 | 第66-68页 |
| 第4章 基于微流控芯片的抗生素对细菌的抑制特性研究 | 第68-89页 |
| 4.1 引言 | 第68页 |
| 4.2 实验材料与研究方法 | 第68-72页 |
| 4.2.1 目标抗生素与微生物 | 第68-69页 |
| 4.2.2 基于微流控双通道芯片的抑制实验 | 第69-70页 |
| 4.2.3 微生物的观测方法 | 第70-71页 |
| 4.2.4 常规方法对照实验 | 第71-72页 |
| 4.3 大肠杆菌受阿莫西林抑制的特性 | 第72-79页 |
| 4.3.1 大肠杆菌在阿莫西林作用下的生长过程 | 第72-75页 |
| 4.3.2 阿莫西林对大肠杆菌的抑制曲线 | 第75-76页 |
| 4.3.3 大肠杆菌在阿莫西林作用下的形态变化特征 | 第76-79页 |
| 4.4 氨氧化菌受阿莫西林抑制的特性 | 第79-83页 |
| 4.4.1 氨氧化菌在芯片及摇瓶中的培养对比 | 第79-81页 |
| 4.4.2 阿莫西林对氨氧化细菌的抑制实验 | 第81-83页 |
| 4.5 丛毛单胞菌受阿莫西林抑制的特性 | 第83-87页 |
| 4.5.1 丛毛单胞菌在芯片上的生长曲线及分析 | 第83-86页 |
| 4.5.2 阿莫西林对丛毛单胞菌的抑制曲线 | 第86-87页 |
| 4.5.3 丛毛单胞菌的形态变化与分析 | 第87页 |
| 4.6 本章小结 | 第87-89页 |
| 第5章 基于微流控芯片的细菌耐受抗生素特性的研究 | 第89-108页 |
| 5.1 引言 | 第89页 |
| 5.2 实验材料与研究方法 | 第89-92页 |
| 5.2.1 目标抗生素与微生物 | 第89-90页 |
| 5.2.2 基于微流控芯片的细菌耐药性实验 | 第90-92页 |
| 5.3 基于单细胞追踪的生长过程描述 | 第92-96页 |
| 5.3.1 正常条件下基于细菌数量和质量的生长曲线比较 | 第92-93页 |
| 5.3.2 基于细菌质量和数量的抑制曲线比较 | 第93-96页 |
| 5.4 基于单细胞识别的细菌的机会耐药性 | 第96-102页 |
| 5.4.1 大肠杆菌的机会耐药性现象与分析 | 第96-98页 |
| 5.4.2 孔板实验对机会耐药性现象的验证 | 第98-100页 |
| 5.4.3 反硝化菌的机会耐药性结果与分析 | 第100-102页 |
| 5.5 氨氧化细菌耐受阿莫西林的特性研究 | 第102-104页 |
| 5.5.1 氨氧化菌在完全抑制后的原位复苏生长 | 第102-103页 |
| 5.5.2 氨氧化菌原位复苏过程中的代谢产物情况 | 第103-104页 |
| 5.6 活性污泥混合菌群对阿莫西林的耐药特征 | 第104-107页 |
| 5.6.1 抑制实验结果 | 第104-106页 |
| 5.6.2 分析与讨论 | 第106-107页 |
| 5.7 本章小结 | 第107-108页 |
| 第6章 基于微流控芯片的细菌对抗生素的降解研究 | 第108-122页 |
| 6.1 引言 | 第108页 |
| 6.2 实验材料与研究方法 | 第108-112页 |
| 6.2.1 目标抗生素与微生物 | 第108-109页 |
| 6.2.2 基于微流控芯片的抗生素降解实验 | 第109页 |
| 6.2.3 基于生物耗氧量的可降解性实验 | 第109-111页 |
| 6.2.4 抗生素及水质分析方法 | 第111-112页 |
| 6.3 抗生素的可生化性测试 | 第112-113页 |
| 6.3.1 混合菌群对抗生素的降解效果及分析 | 第112-113页 |
| 6.3.2 混合菌群的 BOD 分析仪结果及分析 | 第113页 |
| 6.4 混合菌群降解阿莫西林和四环素的特性 | 第113-116页 |
| 6.4.1 阿莫西林降解实验的结果与分析 | 第113-115页 |
| 6.4.2 四环素降解实验的结果与分析 | 第115-116页 |
| 6.5 硝化菌降解阿莫西林和四环素的特性 | 第116-121页 |
| 6.5.1 阿莫西林降解实验的结果与分析 | 第116-119页 |
| 6.5.2 四环素降解实验的结果与分析 | 第119-121页 |
| 6.6 本章小结 | 第121-122页 |
| 第7章 结论与建议 | 第122-125页 |
| 7.1 结论 | 第122-124页 |
| 7.1.1 主要结论 | 第122-124页 |
| 7.1.2 创新点 | 第124页 |
| 7.2 建议 | 第124-125页 |
| 参考文献 | 第125-136页 |
| 致谢 | 第136-138页 |
| 个人简历、在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第138-139页 |
