| 摘要 | 第11-17页 |
| Abstract | 第17-22页 |
| 第一部分 小鼠肝癌 Hca-P 细胞 Annexin A7 表达调控对体外培养肿瘤细胞 VEGF-C 表达的影响 | 第23-42页 |
| （一）前言 | 第23-24页 |
| （二）材料和方法 | 第24-30页 |
| 1. 材料 | 第24-25页 |
| 1.1 动物和细胞系 | 第24页 |
| 1.2 主要仪器及试剂 | 第24-25页 |
| 2. 方法 | 第25-30页 |
| 2.1 细胞培养及传代 | 第25-26页 |
| 2.2 实时荧光定量 PCR 检测 Annexin A7、VEGF-C 基因的表达 | 第26-28页 |
| 2.3 Western Blot 检测 Annexin A7、VEGF-C 蛋白的表达 | 第28-29页 |
| 2.4 ELISA 检测上清液中 VEGF-C 蛋白的表达 | 第29页 |
| 2.5 统计学处理 | 第29-30页 |
| （三）结果 | 第30-33页 |
| 1. qRT-PCR 检测细胞中 Annexin A7、VEGF-C 基因表达 | 第30页 |
| 2. Western blot 检测细胞中 Annexin A7、VEGF-C 蛋白表达 | 第30-32页 |
| 3. ELISA 检测细胞上清液中 VEGF-C 蛋白表达 | 第32-33页 |
| （四）讨论 | 第33-36页 |
| （五）结论 | 第36-37页 |
| （六）参考文献 | 第37-42页 |
| 第二部分 小鼠肝癌Hca-P细胞稳定转染AnnexinA7后对动物肿瘤模型体内 VEGF-C 表达的动态变化 | 第42-68页 |
| （一）前言 | 第42-43页 |
| （二）材料和方法 | 第43-47页 |
| 1. 材料 | 第43-44页 |
| 1.1 动物和细胞系 | 第43页 |
| 1.2 主要仪器及试剂 | 第43页 |
| 1.3 主要溶液配制 | 第43-44页 |
| 2. 方法 | 第44-47页 |
| 2.1 细胞的复苏与培养 | 第44页 |
| 2.2 动物模型的建立 | 第44-45页 |
| 2.3 HE 染色 | 第45页 |
| 2.4 Western blot 检测原发瘤 Annexin A7、VEGF-C 蛋白 | 第45-46页 |
| 2.5 ELISA 检测血清中 AnnexinA7、VEGF-C 蛋白表达 | 第46-47页 |
| 2.6 统计学处理 | 第47页 |
| （三）结果 | 第47-59页 |
| 1. 肿瘤生长情况 | 第47-48页 |
| 2. 肿瘤淋巴结转移情况 | 第48-50页 |
| 3. Western Blot 检测肿瘤组织中 AnnexinA7 、VEGF-C 的动态表达特点 | 第50-53页 |
| 4. 肿瘤组织中 AnnexinA7 、VEGF-C 的动态表达相关性及其与小鼠肿瘤淋巴道转移潜能的关系 | 第53-54页 |
| 5. ELISA 检测血清 AnnexinA7 、VEGF-C 的动态表达 | 第54-55页 |
| 6. 血清中 AnnexinA7 、VEGF-C 的动态表达相关性及其与小鼠肿瘤淋巴道转移潜能的关系 | 第55-59页 |
| （四）讨论 | 第59-62页 |
| （五）结论 | 第62-63页 |
| （六）参考文献 | 第63-68页 |
| 第三部分 小鼠肝癌 Hca-P 细胞稳定转染 AnnexinA7 后对体外培养肿瘤细胞Gelsolin、Galectin-3、ALG-2 和 SODD 表达的影响 | 第68-84页 |
| （一）前言 | 第68-69页 |
| （二）材料和方法 | 第69-73页 |
| 1. 材料 | 第69页 |
| 1.1 动物和细胞系 | 第69页 |
| 1.2 主要仪器及试剂 | 第69页 |
| 2. 方法 | 第69-73页 |
| 2.1 细胞的复苏与培养 | 第69页 |
| 2.2 实时荧光定量 PCR 检测细胞 Gelsolin、Galectin-3、ALG-2 和 SODD 基因表达 | 第69-72页 |
| 2.3 Western Blot 检测细胞中 Gelsolin、Galectin-3 、ALG-2和 SODD 蛋白的表达 | 第72-73页 |
| 2.4 统计学处理 | 第73页 |
| （三）结果 | 第73-78页 |
| 1. ALG-2 和 SODD 在 Hca-F 和 Hca-P 细胞中基因和蛋白表达 | 第73-74页 |
| 2. 各组细胞中 Gelsolin、Galectin-3、ALG-2 和 SODD 基因表达 | 第74-75页 |
| 3. 各组细胞中 Gelsolin、Galectin-3、ALG-2 和 SODD 蛋白表达 | 第75-78页 |
| （四）讨论 | 第78-80页 |
| （五）结论 | 第80-81页 |
| （六）参考文献 | 第81-84页 |
| 第四部分 小鼠肝癌 Hca-P 细胞稳定转染 Annexin A7 后对 Gelsolin、Galectin-3、ALG-2 和 SODD 表达的动态变化 | 第84-112页 |
| （一）前言 | 第84-85页 |
| （二）材料和方法 | 第85-86页 |
| 1. 材料 | 第85-86页 |
| 1.1 动物和细胞系 | 第85页 |
| 1.2 主要仪器及试剂 | 第85-86页 |
| 2. 方法 | 第86页 |
| 2.1 细胞的复苏与培养 | 第86页 |
| 2.2 动物模型的建立 | 第86页 |
| 2.3 HE 染色 | 第86页 |
| 2.4 Western blot 检测原发瘤 Gelsolin、Galectin-3、ALG-2 和SODD 蛋白表达 | 第86页 |
| 2.5 ELISA 检测血清中 Gelsolin、Galectin-3、ALG-2 和 SODD蛋白表达 | 第86页 |
| 2.6 统计学处理 | 第86页 |
| （三）结果 | 第86-103页 |
| 1. Western Blot 检测肿瘤组织中 Gelsolin、Galectin-3、ALG-2 和SODD 的动态表达特点 | 第86-92页 |
| 2. 肿瘤组织中 Gelsolin、Galectin-3、ALG-2 和 SODD 的动态表达的相关性及其与小鼠肿瘤淋巴道转移潜能的关系 | 第92-94页 |
| 3. ELISA 检测血清中 Gelsolin、Galectin-3、ALG-2 和 SODD 的动态表达特点 | 第94-95页 |
| 4. 血清中 Gelsolin、Galectin-3、ALG-2 和 SODD 的动态表达的相关性及其与小鼠肿瘤淋巴道转移潜能的关系 | 第95-103页 |
| （四）讨论 | 第103-107页 |
| （五）结论 | 第107-108页 |
| （六）参考文献 | 第108-112页 |
| 综述 | 第112-127页 |
| 参考文献 | 第118-127页 |
| 附录 | 第127-128页 |
| 攻读学位期间发表论文情况 | 第128-129页 |
| 致谢 | 第129-130页 |
