| 致谢 | 第10-11页 |
| 缩略词表 | 第11-16页 |
| 摘要 | 第16-19页 |
| Abstract | 第19-22页 |
| 第一章 文献综述 | 第23-33页 |
| 1.1 啤酒混浊概述 | 第23-24页 |
| 1.2 混浊蛋白-混浊多酚聚合体的形成机理 | 第24-25页 |
| 1.3 混浊敏感蛋白的研究进展 | 第25-29页 |
| 1.4 混浊性状的分析方法 | 第29页 |
| 1.5 延缓啤酒混浊形成的方法 | 第29-30页 |
| 1.5.1 冷藏后熟 | 第29页 |
| 1.5.2 超滤 | 第29-30页 |
| 1.5.3 添加吸附剂 | 第30页 |
| 1.5.4 酶学法 | 第30页 |
| 1.6 立题意义及技术路线 | 第30-33页 |
| 1.6.1 立题意义 | 第30-31页 |
| 1.6.2 技术路线 | 第31-33页 |
| 第二章 栽培与西藏野生大麦BTI-CMe多态性及分子标记开发 | 第33-44页 |
| 2.1 前言 | 第33-34页 |
| 2.2 材料与方法 | 第34-37页 |
| 2.2.1 试验材料 | 第34页 |
| 2.2.2 SE蛋白多态性筛选 | 第34-35页 |
| 2.2.3 BTI-CMe基因的克隆与测序 | 第35-36页 |
| 2.2.4 等位基因特异性PCR筛选 | 第36页 |
| 2.2.5 SE蛋白的定位分析 | 第36页 |
| 2.2.6 数据处理 | 第36-37页 |
| 2.3 结果与分析 | 第37-42页 |
| 2.3.1 SE蛋白在栽培大麦和西藏野生大麦中的多态性 | 第37页 |
| 2.3.2 BTI-CMe的基因多态性 | 第37-40页 |
| 2.3.3 等位特异性PCR筛选SE蛋白多态性 | 第40页 |
| 2.3.4 SE蛋白的遗传定位 | 第40-42页 |
| 2.4 讨论 | 第42-44页 |
| 第三章 BTI-CMe混浊差异及其机制研究 | 第44-55页 |
| 3.1 前言 | 第44页 |
| 3.2 材料与方法 | 第44-48页 |
| 3.2.1 材料 | 第44页 |
| 3.2.2 原核表达与纯化 | 第44-46页 |
| 3.2.2.1 重组载体构建及转化 | 第44-46页 |
| 3.2.2.2 诱导表达 | 第46页 |
| 3.2.2.3 重组蛋白纯化 | 第46页 |
| 3.2.2.4 SDS-PAGE与Western免疫检测目的蛋白 | 第46页 |
| 3.2.3 酶抑制活性与混浊能力的检测 | 第46-47页 |
| 3.2.4 响应面分析 | 第47-48页 |
| 3.2.5 数据处理 | 第48页 |
| 3.3 结果与分析 | 第48-53页 |
| 3.3.1 BTI-CMe蛋白的氨基酸序列分析 | 第48-49页 |
| 3.3.2 BTI-CMe蛋白的原核表达、纯化及酶活性 | 第49-50页 |
| 3.3.3 BTI-CMe蛋白的混浊能力分析 | 第50-51页 |
| 3.3.4 BTI-CMe蛋白与单宁的互作 | 第51-53页 |
| 3.4 讨论 | 第53-55页 |
| 第四章 啤酒混浊性状的QTL分析 | 第55-62页 |
| 4.1 前言 | 第55-56页 |
| 4.2 材料与方法 | 第56-58页 |
| 4.2.1 试验材料 | 第56页 |
| 4.2.2 微型制麦试验 | 第56页 |
| 4.2.3 微型酿酒试验 | 第56-57页 |
| 4.2.4 啤酒混浊性状测定 | 第57页 |
| 4.2.5 数据分析 | 第57-58页 |
| 4.3 结果与分析 | 第58-61页 |
| 4.3.1 混浊性状的表型差异及相关性分析 | 第58页 |
| 4.3.2 混浊性状的相关性分析 | 第58-59页 |
| 4.3.3 混浊相关性状的QTL定位 | 第59-61页 |
| 4.4 讨论 | 第61-62页 |
| 第五章 啤酒中混浊敏感蛋白的鉴定分析 | 第62-75页 |
| 5.1 前言 | 第62页 |
| 5.2 材料与方法 | 第62-66页 |
| 5.2.1 试验材料 | 第62-63页 |
| 5.2.2 SDS-PAGE/LC-MS | 第63-64页 |
| 5.2.3 2-DE/MS | 第64-66页 |
| 5.3 结果与分析 | 第66-74页 |
| 5.3.1 SDS-PAGE图分析混浊敏感蛋白 | 第66-67页 |
| 5.3.2 LC-MS鉴定的混浊蛋白 | 第67-68页 |
| 5.3.3 2-D电泳图分析 | 第68-69页 |
| 5.3.4 质谱鉴定的混浊蛋白 | 第69-74页 |
| 5.4 讨论 | 第74-75页 |
| 第六章 混浊敏感蛋白BATI-CMb和BATI-CMd的遗传分析及分子标记开发 | 第75-85页 |
| 6.1 前言 | 第75-76页 |
| 6.2 材料与方法 | 第76-77页 |
| 6.2.1 试验材料 | 第76页 |
| 6.2.2 基因克隆及测序分析 | 第76页 |
| 6.2.3 分子标记开发 | 第76-77页 |
| 6.2.4 遗传定位 | 第77页 |
| 6.2.5 数据处理 | 第77页 |
| 6.3 结果与分析 | 第77-83页 |
| 6.3.1 候选基因筛选 | 第77-78页 |
| 6.3.2 BATI-CMb核苷酸与氨基酸组成差异分析 | 第78-80页 |
| 6.3.3 BATI-CMd核苷酸与氨基酸组成差异分析 | 第80-81页 |
| 6.3.4 分子标记开发 | 第81-82页 |
| 6.3.5 遗传定位分析 | 第82-83页 |
| 6.4 讨论 | 第83-85页 |
| 第七章 啤酒混浊性状与麦芽蛋白质、氨基酸组成的相关分析 | 第85-93页 |
| 7.1 前言 | 第85-86页 |
| 7.2 材料与方法 | 第86-87页 |
| 7.2.1 试验材料 | 第86页 |
| 7.2.2 总蛋白质含量测定 | 第86页 |
| 7.2.3 不同类蛋白质的分离与测定 | 第86-87页 |
| 7.2.4 可溶性氨基酸含量的测定 | 第87页 |
| 7.2.5 α-淀粉酶活性测定 | 第87页 |
| 7.2.6 混浊性状测定 | 第87页 |
| 7.2.7 数据统计分析 | 第87页 |
| 7.3 结果与分析 | 第87-91页 |
| 7.3.1 各性状的基因型变异 | 第87-89页 |
| 7.3.2 各性状的相关性分析 | 第89-91页 |
| 7.4 讨论 | 第91-93页 |
| 第八章 氮肥运筹对啤酒混浊性状的影响 | 第93-100页 |
| 8.1 前言 | 第93-94页 |
| 8.2 材料与方法 | 第94-95页 |
| 8.2.1 试验材料及种植 | 第94页 |
| 8.2.2 实验室微型制麦 | 第94页 |
| 8.2.3 实验室微型酿酒试验 | 第94-95页 |
| 8.2.4 混浊性状的测定 | 第95页 |
| 8.2.5 数据分析 | 第95页 |
| 8.3 结果与分析 | 第95-99页 |
| 8.3.1 各因素对混浊性状的影响 | 第95页 |
| 8.3.2 不同品种间混浊性状的差异 | 第95-96页 |
| 8.3.3 不同氮肥运筹对混浊性状的影响 | 第96页 |
| 8.3.4 不同氮肥施用量对混浊性状的影响 | 第96-97页 |
| 8.3.5 氮肥施用与运筹互作对混浊性状的影响 | 第97-99页 |
| 8.4 讨论 | 第99-100页 |
| 第九章 全文总结与展望 | 第100-102页 |
| 参考文献 | 第102-111页 |
| 作者简历 | 第111-112页 |
