| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5页 |
| 符号说明 | 第8-9页 |
| 第一章 绪论 | 第9-19页 |
| §1-1 细菌的群体感应系统 | 第9-10页 |
| §1-2 AHL 受体研究进展 | 第10页 |
| §1-3 生物素-亲和素标记技术 | 第10-13页 |
| 1-3-1 生物素-亲和素系统的特点 | 第10-11页 |
| 1-3-2 生物素-亲和素标记技术的主要方法 | 第11-12页 |
| 1-3-3 生物素-亲和素标记技术的应用 | 第12-13页 |
| §1-4 植物中钙调素的研究进展 | 第13-18页 |
| 1-4-1 钙调素的结构特点 | 第14页 |
| 1-4-2 钙调素的分布 | 第14-15页 |
| 1-4-3 钙调素的亚型 | 第15-16页 |
| 1-4-4 钙调素在植物体内的信号转导机制 | 第16-17页 |
| 1-4-5 钙调素参与的细胞生物学功能 | 第17-18页 |
| §1-5 课题的意义 | 第18-19页 |
| 第二章 植物细胞感应细菌 N-酰基高丝氨酸内酯（AHLs） | 第19-28页 |
| §2-1 材料 | 第19-21页 |
| 2-1-1 供试植物 | 第19页 |
| 2-1-2 供试菌株 | 第19页 |
| 2-1-3 试剂 | 第19-20页 |
| 2-1-4 仪器设备 | 第20页 |
| 2-1-5 培养基及溶液 | 第20-21页 |
| §2-2 方法 | 第21-23页 |
| 2-2-1 拟南芥的种植 | 第21-22页 |
| 2-2-2 拟南芥主根长的测定 | 第22页 |
| 2-2-3 薄层层析法检测 Bio-OC6 活性 | 第22页 |
| 2-2-4 提取拟南芥原生质体 | 第22-23页 |
| 2-2-5 荧光显微镜观察 Bio-OC6 结合 | 第23页 |
| §2-3 结果 | 第23-26页 |
| 2-3-1 Bio-OC6 对野生型拟南芥主根生长的影响 | 第23-24页 |
| 2-3-2 Bio-OC6 的生物活性 | 第24页 |
| 2-3-3 Bio-OC6 与拟南芥原生质体最佳反应条件 | 第24-25页 |
| 2-3-4 Bio-OC6 结合位点与 3OC6-HSL 结合位点一致 | 第25-26页 |
| §2-4 小结 | 第26-28页 |
| 第三章 钙调素参与 AHLs 调控植物生长的研究 | 第28-52页 |
| §3-1 材料 | 第28-33页 |
| 3-1-1 供试植物 | 第28页 |
| 3-1-2 引物 | 第28-29页 |
| 3-1-3 试剂 | 第29-30页 |
| 3-1-4 仪器设备 | 第30-31页 |
| 3-1-5 培养基及溶液 | 第31-33页 |
| §3-2 方法 | 第33-39页 |
| 3-2-1 拟南芥的种植 | 第33-34页 |
| 3-2-2 AHLs 处理拟南芥幼苗 | 第34页 |
| 3-2-3 拟南芥主根长的测定 | 第34页 |
| 3-2-4 植物总 RNA 的提取 | 第34-35页 |
| 3-2-5 RT-PCR 与 cDNA 的合成 | 第35-36页 |
| 3-2-6 Real Time PCR 检测基因的表达 | 第36-37页 |
| 3-2-7 提取植物全蛋白 | 第37页 |
| 3-2-8 Bradford 测定蛋白浓度 | 第37页 |
| 3-2-9 SDS-PAGE 分析 | 第37-38页 |
| 3-2-10 Western Blot 检测蛋白表达量 | 第38页 |
| 3-2-11 酶联免疫法检测蛋白表达量 | 第38-39页 |
| §3-3 结果 | 第39-50页 |
| 3-3-1 AHLs 对不同基因型拟南芥主根生长的影响 | 第39-41页 |
| 3-3-2 不同浓度钙调素抑制剂 W7 及 TFP 对拟南芥主根长的影响 | 第41-44页 |
| 3-3-3 W7 及 TFP 对钙调素蛋白表达量的影响 | 第44-45页 |
| 3-3-4 W7 及 TFP 影响 AHLs 对拟南芥主根生长的调控 | 第45-47页 |
| 3-3-5 real-time PCR 检测拟南芥中 AHLs 对 cam1-cam9、camp 基因表达的影响 | 第47-49页 |
| 3-3-6 AHLs 对拟南芥钙调素蛋白表达量的影响 | 第49-50页 |
| §3-4 小结 | 第50-52页 |
| 第四章 结论 | 第52-54页 |
| 参考文献 | 第54-57页 |
| 致谢 | 第57-58页 |
| 攻读学位期间所取得的相关科研成果 | 第58页 |
