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1,25(OH)2D3促进阿霉素诱导甲状腺乳头状癌细胞凋亡及其作用机制的研究

摘要第4-7页
Abstract第7-9页
英文缩略语第10-17页
第一部分 :甲状腺乳头状癌血清1,25(OH)2D3水平及磷酸化组织信号转导与转录激活子3与维生素D受体表达情况的研究第17-28页
    1 前言第17-18页
    2 材料与方法第18-21页
        2.1 材料第18-19页
            2.1.1 主要试剂第18页
            2.1.2 主要仪器第18页
            2.1.3 研究对象第18-19页
        2.2 方法第19-20页
            2.2.1 ELISA法检测外周血血清1,25(OH)2D3浓度第19页
            2.2.2 IHC步骤第19-20页
        2.3 统计学分析第20-21页
    3 结果第21-25页
        3.1 PTC与对照组血清1,25(OH)2D3浓度比较第21页
        3.2 p-STAT3与VDR在PTC中的表达情况第21-22页
        3.3 p-STAT3在PTC与癌旁组织中的表达比较第22页
        3.4 PTC组织中p-STAT3与VDR细胞核表达相关性分析第22页
        3.5 血清1,25(OH)2D3水平与PTC临床病理资料的关系第22-23页
        3.6 p-STAT3表达与PTC临床病理资料的关系第23-25页
    4 讨论第25-27页
    5 小结第27-28页
第二部分 :1,25(OH)2D3促进阿霉素诱导甲状腺乳头状癌细胞凋亡的实验研究第28-50页
    1 前言第28-30页
    2 材料与方法第30-40页
        2.1 材料第30-34页
            2.1.1 细胞系第30页
            2.1.2 主要药物及试剂第30-31页
            2.1.3 实验用引物序列第31-32页
            2.1.4 主要仪器设备第32-33页
            2.1.5 细胞培养第33页
            2.1.6 慢病毒感染PTC细胞第33-34页
        2.2 方法第34-38页
            2.2.1 CCK-8法检测PTC细胞增殖能力第34页
            2.2.2 流式细胞仪检测PTC细胞凋亡第34-35页
            2.2.3 PTC细胞总蛋白的提取第35页
            2.2.4 蛋白浓度的测定第35页
            2.2.5 配胶及加样第35-36页
            2.2.6 电泳第36页
            2.2.7 转膜第36页
            2.2.8 切胶第36-37页
            2.2.9 抗体孵育第37页
            2.2.10 ECL发光第37页
            2.2.11 PTC细胞RNA的提取第37-38页
            2.2.12 测量RNA的浓度第38页
            2.2.13 反转录第38页
            2.2.14 Real time PCR第38页
        2.3 统计学分析第38-40页
    3 结果第40-47页
        3.1 ADM对PTC细胞的抑制作用存在浓度依赖性第40页
        3.2 1 ,25(OH)2D3明显增加ADM对PTC细胞的抑制作用第40-41页
        3.3 1 ,25(OH)2D3明显增加ADM对PTC细胞的凋亡作用第41页
        3.4 1 ,25(OH)2D3明显增加ADM诱导PTC细胞cleaved caspase-3的表达第41-42页
        3.5 1 ,25(OH)2D3及ADM对PTC细胞p-STAT3表达的影响第42页
        3.6 ADM对PTC细胞内凋亡抑制蛋白表达情况第42-43页
        3.7 慢病毒过表达p-STAT3后PTC细胞活力及凋亡情况第43-47页
    4 讨论第47-49页
    5 小结第49-50页
第三部分 :1,25(OH)2D3诱导甲状腺乳头状癌细胞非受体型酪氨酸磷酸酶2表达的机制研究第50-67页
    1 前言第50-51页
    2 材料与方法第51-61页
        2.1 材料第51-55页
            2.1.1 细胞系第51页
            2.1.2 主要药物及试剂第51-52页
            2.1.3 实验用引物序列第52-53页
            2.1.4 实验用到的小干扰RNA序列第53页
            2.1.5 主要仪器设备第53-55页
            2.1.6 细胞培养第55页
        2.2 方法第55-59页
            2.2.1 PTC细胞总蛋白的提取第55-56页
            2.2.2 PTC细胞核蛋白及浆蛋白的提取第56页
            2.2.3 蛋白浓度的测定第56页
            2.2.4 配胶及加样第56-57页
            2.2.5 电泳第57页
            2.2.6 转膜第57-58页
            2.2.8 抗体孵育第58页
            2.2.9 ECL发光第58页
            2.2.10 PTC细胞RNA的提取第58-59页
            2.2.11 测量RNA的浓度第59页
            2.2.13 反转录第59页
            2.2.14 Real time PCR第59页
        2.3 统计学分析第59-61页
    3 结果第61-65页
        3.1 1 ,25(OH)2D3对PTC细胞内p-STAT3负性调节因子表达的情况第61页
        3.2 siRNA干扰PTPN2后1,25(OH)2D3对PTC细胞p-STAT3表达的影响第61-62页
        3.3 siRNA干扰PTPN2后PTC细胞内p-STAT3表达变化情况第62-63页
        3.4 1 ,25(OH)2D3促进VDR细胞核内表达增加第63页
        3.5 siRNA干扰VDR后VDR的表达情况第63-64页
        3.6 siRNA干扰VDR后1,25(OH)2D3对PTC细胞PTPN2、p-STAT3的表达第64-65页
    4 讨论第65-66页
    5 小结第66-67页
结论第67-68页
本研究创新性的自我评价第68-69页
参考文献第69-76页
文献综述第76-87页
    参考文献第81-87页
攻读学位期间取得的研究成果第87-88页
致谢第88-89页
个人简历第89页

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