| 致谢 | 第8-12页 |
| 缩略词表 | 第12-14页 |
| 摘要 | 第14-17页 |
| Abstract | 第17-19页 |
| 1 绪论 | 第20-39页 |
| 1.1 榨菜的起源和植物学特性 | 第20-21页 |
| 1.2 植物细胞与器官生长发育 | 第21-32页 |
| 1.2.1 细胞分裂和核内再复制调控的分子机制 | 第22-28页 |
| 1.2.2 细胞分裂和核内再复制与器官生长发育 | 第28-31页 |
| 1.2.3 细胞膨大与器官生长发育 | 第31-32页 |
| 1.3 环境与植物生长发育 | 第32-35页 |
| 1.3.1 植物表型可塑性 | 第32-35页 |
| 1.3.2 环境调控植株生长发育的分子机制 | 第35页 |
| 1.4 DNA甲基化在植物生长发育过程中的作用 | 第35-37页 |
| 1.5 本研究的目的与意义 | 第37-39页 |
| 2 细胞分裂和核内再复制在瘤状茎发育过程中的作用 | 第39-59页 |
| 2.1 引言 | 第39-41页 |
| 2.2 材料与方法 | 第41-45页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第41-42页 |
| 2.2.2 实验方法 | 第42-45页 |
| 2.3 结果与分析 | 第45-56页 |
| 2.3.1 瘤状茎不同部位的核DNA相对含量分析 | 第45页 |
| 2.3.2 细胞周期相关基因及细胞膨大相关基因的克隆 | 第45-54页 |
| 2.3.3 细胞周期相关基因及细胞膨大相关基因在瘤状茎不同部位的差异表达 | 第54-56页 |
| 2.4 讨论 | 第56-59页 |
| 3 RBR基因在榨菜瘤状茎生长发育过程中的作用 | 第59-73页 |
| 3.1 引言 | 第59-61页 |
| 3.2 材料与方法 | 第61-62页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第61页 |
| 3.2.2 实验方法 | 第61-62页 |
| 3.3 结果与分析 | 第62-70页 |
| 3.3.1 榨菜和推测亲本中的RBR基因cDNA获得 | 第62-65页 |
| 3.3.2 RBRs系统关系分析 | 第65-67页 |
| 3.3.3 RBRs基因在不同组织之间的差异表达 | 第67-69页 |
| 3.3.4 BjRBR1-4在榨菜瘤状茎生长发育的不同时期及不同部位的表达水平变化 | 第69-70页 |
| 3.4 讨论 | 第70-73页 |
| 4 不同光周期与温度处理对榨菜瘤状茎生长发育的影响 | 第73-86页 |
| 4.1 引言 | 第73-75页 |
| 4.2 材料与方法 | 第75-76页 |
| 4.2.1 实验材料与处理 | 第75页 |
| 4.2.2 实验方法 | 第75-76页 |
| 4.3 结果与分析 | 第76-83页 |
| 4.3.1 不同光周期和温度条件对榨菜茎生长发育的影响 | 第76-78页 |
| 4.3.2 不同光周期与温度条件下的榨菜茎的解剖结构分析 | 第78-80页 |
| 4.3.3 不同光周期与温度条件下的榨菜茎中细胞周期相关基因、细胞膨大基因的表达分析 | 第80-83页 |
| 4.4 讨论 | 第83-86页 |
| 5 双向电泳筛选榨菜瘤状茎膨大相关蛋白及MET的克隆与表达分析 | 第86-104页 |
| 5.1 引言 | 第86-88页 |
| 5.2 材料与方法 | 第88-93页 |
| 5.2.1 实验材料 | 第88页 |
| 5.2.2 实验方法 | 第88-93页 |
| 5.3 结果与分析 | 第93-102页 |
| 5.3.1 榨菜茎膨大前后的蛋白质组学分析 | 第93-97页 |
| 5.3.2 不同浓度的甲硫氨酸溶液处理 | 第97-98页 |
| 5.3.3 MET的克隆及系统进化关系分析 | 第98-100页 |
| 5.3.4 MET在榨菜茎发育不同时期的qRT-PCR定量表达分析 | 第100-102页 |
| 5.4 讨论 | 第102-104页 |
| 6 结论、创新点与后续展望 | 第104-107页 |
| 6.1 结论 | 第104-105页 |
| 6.2 创新点 | 第105-106页 |
| 6.3 后续展望 | 第106-107页 |
| 参考文献 | 第107-123页 |
| 博士期间发表论文情况 | 第123页 |
