| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-11页 |
| 1 文献综述 | 第11-21页 |
| ·猕猴概况 | 第11-12页 |
| ·猕猴分布及分类 | 第11-12页 |
| ·猕猴生物学特性及应用价值 | 第12页 |
| ·主要组织相容性复合体(MHC)研究概述 | 第12-15页 |
| ·MHC的起源和进化 | 第12-13页 |
| ·MHC多态性及其维持机制 | 第13-15页 |
| ·MHC在保护生物学中的应用 | 第15页 |
| ·猕猴MHC(Mamu)基因的结构和多态性研究进展 | 第15-19页 |
| ·猕猴MHC基因的结构和定位 | 第15-17页 |
| ·MamuⅡ类分子的结构 | 第17页 |
| ·MamuⅡ类基因多态性研究进展 | 第17-19页 |
| ·MamuⅡ类基因的分型方法 | 第19-20页 |
| ·DGGE技术介绍 | 第19页 |
| ·DGGE技术原理 | 第19-20页 |
| ·DGGE在MHC研究中的运用 | 第20页 |
| ·论文的立论依据、研究内容和目的 | 第20-21页 |
| 2 材料与方法 | 第21-33页 |
| ·实验材料 | 第21-25页 |
| ·实验样本及保存 | 第21页 |
| ·主要仪器设备 | 第21-22页 |
| ·主要试剂及其配制 | 第22-25页 |
| ·基因组DNA的提取与检测 | 第25-26页 |
| ·基因组DNA的提取 | 第25-26页 |
| ·DNA溶液浓度的检测 | 第26页 |
| ·Mamu-DPB1外显子2序列的扩增 | 第26-27页 |
| ·引物设计 | 第26-27页 |
| ·Mamu-DPB1外显子2的一次PCR扩增 | 第27页 |
| ·PCR产物电泳检测 | 第27页 |
| ·PCR产物的DGGE检测及条带回收 | 第27-33页 |
| ·PCR产物的DGGE检测 | 第27-30页 |
| ·回收条带的PCR扩增 | 第30页 |
| ·克隆测序 | 第30-33页 |
| ·数据处理 | 第33页 |
| 3 实验结果与分析 | 第33-48页 |
| ·DNA提取结果 | 第33-34页 |
| ·PCR产物检测结果 | 第34-37页 |
| ·PCR扩增产物1.0%琼脂糖凝胶电泳检测 | 第34-35页 |
| ·Mamu-DPB1一次PCR扩增产物的DGGE分离 | 第35-36页 |
| ·二次PCR产物的克隆结果 | 第36-37页 |
| ·结果分析 | 第37-48页 |
| ·等位基因获得及其序列特征 | 第37-38页 |
| ·Mamu-DPB1等位基因在四川猕猴群体中的频率分布 | 第38-42页 |
| ·猕猴DPB1等位基因exon 2的自然选择性检验 | 第42-43页 |
| ·猕猴和食蟹猴DPB1等位基因的氨基酸序列比对 | 第43-45页 |
| ·Mamu-DPB1等位基因的系统发生分析 | 第45-47页 |
| ·各群体内平均遗传距离 | 第47页 |
| ·群体间遗传距离 | 第47-48页 |
| 4 讨论 | 第48-55页 |
| ·关于抽样和样本含量 | 第48-49页 |
| ·基因组DNA的提取及PCR条件 | 第49页 |
| ·引物设计 | 第49-50页 |
| ·DGGE实验条件的优化 | 第50-51页 |
| ·电泳条件的优化 | 第50-51页 |
| ·染色方法的选择 | 第51页 |
| ·变性梯度的优化 | 第51页 |
| ·MHC-DPB1基因的多态性 | 第51-55页 |
| ·MHC-DPB1基因与种群生存力的关系 | 第51-52页 |
| ·Mamu-DPB1基因的地区特异性 | 第52-53页 |
| ·MHC-DPB1基因的序列多样性及自然选择 | 第53页 |
| ·MHC-DPB1基因的聚类分析 | 第53-54页 |
| ·各种群内及种群间的平均遗传距离 | 第54-55页 |
| ·小结 | 第55页 |
| 5 结论 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-63页 |
| 致谢 | 第63-64页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第64页 |