| 中英文对照表 | 第8-10页 |
| 中文摘要 | 第10-12页 |
| ABSTRACT | 第12-13页 |
| 前言 | 第14-20页 |
| 参考文献 | 第17-20页 |
| 第一部分 铂-唑来膦酸配合物对肿瘤细胞的增殖影响 | 第20-32页 |
| 引言 | 第20页 |
| 材料与方法 | 第20页 |
| 1 材料 | 第20-22页 |
| 1.1 细胞株与铂-唑来膦酸配合物 | 第20页 |
| 1.2 仪器 | 第20-21页 |
| 1.3 试剂 | 第21页 |
| 1.4 常用缓冲液配制 | 第21-22页 |
| 2 实验方法 | 第22-24页 |
| 2.1 细胞培养和处理 | 第22-23页 |
| 2.2 细胞存活率的测定 | 第23页 |
| 2.3 平板克隆形成实验 | 第23-24页 |
| 2.4 统计学处理 | 第24页 |
| 3 实验结果 | 第24-29页 |
| 3.1 {[Pt(en)]_2ZL}对肿瘤细胞增殖的影响 | 第24-27页 |
| 3.2 {[Pt(en)]_2ZL}对人胃癌细胞SGC7901的细胞毒性研究 | 第27-28页 |
| 3.3 {[Pt(en)]_2ZL}对人胃癌细胞SGC7901形成细胞克隆能力的影响 | 第28-29页 |
| 讨论 | 第29-30页 |
| 结论 | 第30-31页 |
| 参考文献 | 第31-32页 |
| 第二部分 铂-唑来膦酸配合物对人胃癌细胞SGC7901周期的影响 | 第32-48页 |
| 引言 | 第32-33页 |
| 材料与方法 | 第33页 |
| 1 材料 | 第33-36页 |
| 1.1 细胞株(参见第一部分) | 第33页 |
| 1.2 仪器 | 第33-34页 |
| 1.3 试剂 | 第34页 |
| 1.4 常用缓冲液的配制 | 第34-36页 |
| 2 实验方法 | 第36-41页 |
| 2.1 流式细胞术检测细胞周期分布 | 第36-37页 |
| 2.2 细胞衰老半乳糖苷酶染色 | 第37页 |
| 2.3 免疫荧光染色观测微管结构 | 第37页 |
| 2.4 Western Blot法 | 第37-41页 |
| 2.5 统计学处理(实验方法参见第一部分) | 第41页 |
| 3 实验结果 | 第41-45页 |
| 3.1 {[Pt(en)]_2ZL}对人胃癌细胞SGC7901细胞周期分布的影响 | 第41-42页 |
| 3.2 {[Pt(en)]_2ZL}对人胃癌细胞SGC7901衰老的影响 | 第42-43页 |
| 3.3 {[Pt(en)]_2ZL}对人胃癌细胞SGC7901的微管动态平衡的影响 | 第43页 |
| 3.4 {[Pt(en)]_2ZL}影响人胃癌细胞SGC7901内细胞周期相关蛋白的表达 | 第43-45页 |
| 讨论 | 第45-46页 |
| 结论 | 第46页 |
| 参考文献 | 第46-48页 |
| 第三部分 铂-唑来膦酸配合物对人胃癌细胞SGC7901凋亡的影响 | 第48-62页 |
| 引言 | 第48-49页 |
| 材料与方法 | 第49页 |
| 1 材料 | 第49-50页 |
| 1.1 细胞株(参见第一部分) | 第49页 |
| 1.2 仪器(参见第二部分) | 第49页 |
| 1.3 试剂 | 第49-50页 |
| 1.4 常用缓冲液的配制 | 第50页 |
| 2 实验方法 | 第50-52页 |
| 2.1 Hoechst 33342/PI双染 | 第50-51页 |
| 2.2 线粒体膜电位检测 | 第51页 |
| 2.3 TUNEL染色法检测细胞凋亡 | 第51页 |
| 2.4 Annexin V-FITC/PI细胞凋亡检测 | 第51-52页 |
| 2.5 Western Blot法(实验方法参见第二部分) | 第52页 |
| 2.6 统计学处理(实验方法参见第一部分) | 第52页 |
| 3 实验结果 | 第52-58页 |
| 3.1 Hoechst/PI双染对细胞凋亡形态的评价 | 第52-53页 |
| 3.2 {[Pt(en)]_2ZL}对人胃癌细胞SGC7901线粒体膜电位的影响 | 第53-54页 |
| 3.3 TUNEL法检测细胞凋亡 | 第54-55页 |
| 3.4 Annxin V-FITC/PI细胞凋亡检测盒检测凋亡发生率 | 第55-56页 |
| 3.5 {[Pt(en)]_2ZL}影响人胃癌细胞SGC7901内细胞凋亡相关蛋白的表达 | 第56-58页 |
| 讨论 | 第58-60页 |
| 结论 | 第60页 |
| 参考文献 | 第60-62页 |
| 第四部分 铂-唑来膦酸配合物对人胃癌细胞SGC7901中甲羟戊酸途径的影响 | 第62-73页 |
| 引言 | 第62页 |
| 材料与方法 | 第62页 |
| 1 材料 | 第62-63页 |
| 1.1 细胞株(参见第一部分) | 第63页 |
| 1.2 仪器(参见第二部分) | 第63页 |
| 1.3 试剂 | 第63页 |
| 1.4 常用缓冲液的配制 | 第63页 |
| 2 实验方法 | 第63页 |
| 2.1 FOH和GGOH对{[Pt(en)]_2ZL}引起的人胃癌细胞SGC7901存活率的影响(实验方法参见第一部分) | 第63页 |
| 2.2 流式细胞术检测细胞周期分布(实验方法参见第二部分) | 第63页 |
| 2.3 Annexin V-FITC/PI细胞凋亡检测(实验方法参见第三部分) | 第63页 |
| 2.4 Western Blot法(实验方法参见第二部分) | 第63页 |
| 2.5 统计学处理(实验方法参见第一部分) | 第63页 |
| 3 实验结果 | 第63-69页 |
| 3.1 FOH和GGOH对{[Pt(en)]_2ZL}引起的人胃癌细胞SGC7901存活率的影响 | 第63-65页 |
| 3.2 FOH对{[Pt(en)]_2ZL}引起的人胃癌细胞SGC7901细胞周期阻滞的影响 | 第65页 |
| 3.3 FOH对{[Pt(en)]_2ZL}引起的人胃癌细胞SGC7901细胞凋亡的影响 | 第65-67页 |
| 3.4 FOH对{[Pt(en)]_2ZL}引起的人胃癌细胞SGC7901细胞周期和细胞凋亡相关蛋白表达水平变化的影响 | 第67-68页 |
| 3.5 {[Pt(en)]_2ZL}可影响人胃癌细胞SGC7901内小G蛋白家族中Ras和RhoA蛋白的表达水平 | 第68-69页 |
| 讨论 | 第69-71页 |
| 结论 | 第71页 |
| 参考文献 | 第71-73页 |
| 第五部分 铂-唑来膦酸配合物对人胃癌细胞SGC7901中自噬途径的影响 | 第73-79页 |
| 引言 | 第73页 |
| 材料与方法 | 第73页 |
| 1 材料 | 第73-74页 |
| 1.1 细胞株(参见第一部分) | 第73页 |
| 1.2 仪器(参见第二部分) | 第73页 |
| 1.3 试剂 | 第73-74页 |
| 1.4 常用缓冲液的配制 | 第74页 |
| 2 实验方法 | 第74页 |
| 2.1 AO荧光染色 | 第74页 |
| 2.2 Western Blot法(实验方法参见第二部分) | 第74页 |
| 2.3 统计学处理(实验方法参见第一部分) | 第74页 |
| 3 实验结果 | 第74-76页 |
| 3.1 {[Pt(en)]_2ZL}对人胃癌细胞SGC7901自噬的影响 | 第74-75页 |
| 3.2 {[Pt(en)]_2ZL}对人胃癌细胞SGC7901内自噬相关蛋白LC3的表达水平的影响 | 第75-76页 |
| 讨论 | 第76-77页 |
| 结论 | 第77页 |
| 参考文献 | 第77-79页 |
| 综述 | 第79-89页 |
| 参考文献 | 第85-89页 |
| 攻读学位期间发表文章情况 | 第89-90页 |
| 致谢 | 第90-91页 |
