| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 英文缩写及全称和中文对照 | 第10-11页 |
| 第1章 引言 | 第11-13页 |
| 第2章 材料与方法 | 第13-26页 |
| 2.1 实验材料及试剂 | 第13-14页 |
| 2.2 实验主要仪器和设备 | 第14-15页 |
| 2.3 实验方法 | 第15-25页 |
| 2.3.1 H9c2细胞的培养 | 第15-16页 |
| 2.3.2 基因转导技术 | 第16-17页 |
| 2.3.3 H9c2心肌细胞缺氧复氧H/R模型的构建 | 第17页 |
| 2.3.4 免疫印迹(Western Blotting)法检测H9c2心肌细胞中蛋白表达 | 第17-21页 |
| 2.3.5 H9c2细胞存活率和乳酸脱氢酶(LDH)活性的测定 | 第21页 |
| 2.3.6 H9c2细胞内ROS与丙二醛(MDA)的含量的测定 | 第21-22页 |
| 2.3.7 免疫共沉淀(Co-immunoprecipitation，Co-IP) | 第22-23页 |
| 2.3.8 染色质免疫共沉淀法（Chromatin Immunoprecipitation，Ch IP） | 第23-24页 |
| 2.3.9 双荧光素酶报告基因检测 | 第24-25页 |
| 2.4 处理数据 | 第25-26页 |
| 第3章 结果 | 第26-33页 |
| 3.1 DJ-1 诱导H9c2细胞内抗氧化酶表达，对抗H/R诱发的氧化应激 | 第26-29页 |
| 3.2 DJ-1 激活H9c2细胞内Nrf2-ARE信号通路 | 第29-30页 |
| 3.3 Nrf2-ARE信号通路介导DJ-1 上调抗氧化酶蛋白表达 | 第30-31页 |
| 3.4 Nrf2-ARE信号通路的激活介导DJ-1 对抗H/R所诱发氧化应激损伤 | 第31-33页 |
| 第4章 讨论 | 第33-36页 |
| 第5章 结论 | 第36-37页 |
| 5.1 结论 | 第36页 |
| 5.2 展望 | 第36-37页 |
| 致谢 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-41页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第41-42页 |
| 综述 | 第42-46页 |
| 参考文献 | 第44-46页 |
