| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 1 引言 | 第8-17页 |
| 1.1 研究背景 | 第8页 |
| 1.2 巴西橡胶树简介以及橡胶树乳管分化机制和胶乳产生途径 | 第8-10页 |
| 1.2.1 巴西橡胶树简介 | 第8页 |
| 1.2.2 橡胶树乳管分化的研究 | 第8-9页 |
| 1.2.3 巴西橡胶树胶乳的生物合成 | 第9-10页 |
| 1.3 植物茉莉酸信号途径概述 | 第10-15页 |
| 1.3.1 茉莉酸及其衍生物简介 | 第10页 |
| 1.3.2 茉莉酸的生物合成 | 第10-11页 |
| 1.3.3 茉莉酸的信号传导途径 | 第11-12页 |
| 1.3.4 JAZ基因家族 | 第12-13页 |
| 1.3.5 茉莉酸信号的受体 | 第13-14页 |
| 1.3.6 茉莉酸在橡胶生物合成中的作用 | 第14-15页 |
| 1.4 酵母双杂技术 | 第15-16页 |
| 1.4.1 酵母双杂技术 | 第15页 |
| 1.4.2 酵母双杂技术原理 | 第15-16页 |
| 1.4.3 酵母双杂系统的构建 | 第16页 |
| 1.5 本研究的目的和意义 | 第16页 |
| 1.6 本研究技术路线 | 第16-17页 |
| 2 材料与方法 | 第17-31页 |
| 2.1 材料与试剂 | 第17页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第17页 |
| 2.1.2 试剂及工具 | 第17页 |
| 2.2 实验方法 | 第17-31页 |
| 2.2.1 巴西橡胶HbJAZs基因的cDNA全长克隆 | 第17-21页 |
| 2.2.2 巴西橡胶HbJAZs基因荧光定量表达 | 第21-24页 |
| 2.2.3 HbJAZs酵母双杂载体构建以及与HbCoil1蛋白和橡胶JAZ家族酵母双杂互作 | 第24-31页 |
| 3 结果与分析 | 第31-46页 |
| 3.1 HbJAZ3,5,6,12的cDNA克隆以及分析 | 第31-35页 |
| 3.1.1 HbJAZ3,5,6,12的cDNA克隆 | 第31页 |
| 3.1.2 橡胶基因HbJAZ3,5,6,12的生物信息学分析 | 第31-34页 |
| 3.1.3 HbJAZ3,5,6,12同源性以及蛋白序列分析 | 第34-35页 |
| 3.2 HbJAZs荧光定量PCR分析 | 第35-39页 |
| 3.2.1 橡胶树叶片RNA提取 | 第35-36页 |
| 3.2.2 荧光定量PCR | 第36-39页 |
| 3.3 HbJAZs之间的蛋白互作验证 | 第39-43页 |
| 3.3.1 构建HbJAZ3,5,6,12的诱饵以及捕获载体 | 第39页 |
| 3.3.2 酵母感受态的高效转化 | 第39-40页 |
| 3.3.3 酵母双杂转化 | 第40-43页 |
| 3.4 HbJAZs与HbCoi1的蛋白互作验证 | 第43-46页 |
| 3.4.1 HbJAZs的诱饵载体以及HbCoi1的捕获载体的构建 | 第43页 |
| 3.4.2 酵母感受态的转化 | 第43-44页 |
| 3.4.3 酵母双杂转化 | 第44-46页 |
| 4 讨论 | 第46-49页 |
| 4.1 HbJAZ3,5,6,12基因的克隆以及生物信息学分析 | 第46-47页 |
| 4.2 HbJAZ3,5,6,12在橡胶树中的表达分析 | 第47页 |
| 4.3 HbJAZ蛋白之间的互作 | 第47-48页 |
| 4.4 HbCoi1与HbJAZ蛋白之间的互作 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-52页 |
| 附录 | 第52-55页 |
| 致谢 | 第55页 |
