| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 1. 引言 | 第10-22页 |
| 1.1. 全氟辛酸(PFOA)概述 | 第10-15页 |
| 1.1.1. PFOA的理化性质 | 第10-11页 |
| 1.1.2. PFOA的来源,分布和特点 | 第11-12页 |
| 1.1.3. PFOA的污染现状 | 第12-14页 |
| 1.1.3.1. 水体 | 第12-13页 |
| 1.1.3.2. 固体介质(沉积物、土壤和污泥) | 第13页 |
| 1.1.3.3. 大气 | 第13-14页 |
| 1.1.3.4. 生物 | 第14页 |
| 1.1.4. 世界各国对PFOA的限制和减排行动 | 第14-15页 |
| 1.2. 全氟辛酸的毒性效应研究现状 | 第15页 |
| 1.3. 全氟辛酸与细菌相互作用关系 | 第15-17页 |
| 1.4. 细菌群落多样性的分析方法 | 第17-19页 |
| 1.4.1. 传统的细菌分离培养法 | 第17页 |
| 1.4.2. BIOLOG法 | 第17页 |
| 1.4.3. 磷脂脂肪酸法(PLEA) | 第17-18页 |
| 1.4.4. 现代分子生物学方法 | 第18-19页 |
| 1.5. 选题的意义与目的 | 第19-20页 |
| 1.6. 研究内容与技术路线 | 第20-22页 |
| 2. 沉积物中PFASs和物理化学性质的测定 | 第22-38页 |
| 2.1. 研究区域概况及样品采集 | 第22-23页 |
| 2.1.1. 研究区域概况及样地设计 | 第22页 |
| 2.1.2. 样品的采集 | 第22-23页 |
| 2.2. 沉积物中全氟化合物(PFASs)的测定 | 第23-32页 |
| 2.2.1. 实验材料与仪器 | 第23-24页 |
| 2.2.1.1. 主要试剂与材料 | 第23页 |
| 2.2.1.2. 主要实验仪器 | 第23-24页 |
| 2.2.1.3. 标准样品 | 第24页 |
| 2.2.2. 实验方法 | 第24-27页 |
| 2.2.2.1. 样品预处理 | 第24-25页 |
| 2.2.2.2. 仪器条件 | 第25-26页 |
| 2.2.2.3. 质量保证与质量控制 | 第26-27页 |
| 2.2.2.4. 统计方法 | 第27页 |
| 2.2.3. 结果与讨论 | 第27-32页 |
| 2.2.3.1.4 月份小清河PFASs含量及组成特征 | 第27-29页 |
| 2.2.3.2.7 月份小清河PFASs含量及组成特征 | 第29-32页 |
| 2.2.4. 小结 | 第32页 |
| 2.3. 沉积物中物理化学性质的测定 | 第32-38页 |
| 2.3.1. 沉积物理化性质测定方法 | 第32-33页 |
| 2.3.2. 结果与讨论 | 第33-37页 |
| 2.3.2.1.4 月份沉积物环境因子特征 | 第33页 |
| 2.3.2.2.7 月份沉积物环境因子特征 | 第33-34页 |
| 2.3.2.3.4 月份环境因子间相关性分析 | 第34-37页 |
| 2.3.2.4.7 月份环境因子间相关性分析 | 第37页 |
| 2.3.3. 小结 | 第37-38页 |
| 3. 小清河沉积物细菌群落多样性分析 | 第38-52页 |
| 3.1. 实验材料与仪器 | 第38页 |
| 3.2. 实验方法 | 第38-39页 |
| 3.2.1. 沉积物样品DNA的提取 | 第38页 |
| 3.2.2. 16s RDNA-V4区的PCR扩增和产物纯化 | 第38页 |
| 3.2.3. 16s RDNA文库构建和测序 | 第38-39页 |
| 3.2.4. 生物信息分析流程 | 第39页 |
| 3.3. 4 月份沉积物细菌高通量测序分析结果与讨论 | 第39-46页 |
| 3.3.1. 细菌丰度 | 第39-41页 |
| 3.3.2. 细菌在门和纲水平上的群落组成 | 第41-43页 |
| 3.3.3. 细菌在属水平上的群落组成 | 第43-44页 |
| 3.3.4. 环境因子与细菌群落关系分析 | 第44-46页 |
| 3.4.7 月份沉积物细菌高通量测序分析结果与讨论 | 第46-49页 |
| 3.4.1. 细菌丰度 | 第46-47页 |
| 3.4.2. 细菌群落结构组成 | 第47-49页 |
| 3.4.3. 环境因子与细菌群落关系分析 | 第49页 |
| 3.5. 小结 | 第49-52页 |
| 3.5.1.4 月份沉积物细菌高通量测序分析小结 | 第49-50页 |
| 3.5.2.7 月份沉积物细菌高通量测序分析小结 | 第50-52页 |
| 4. PFOA对T. thioparus和T. denitrificans生长的影响 | 第52-60页 |
| 4.1. 材料与方法 | 第53-54页 |
| 4.1.1. 供试菌种 | 第53页 |
| 4.1.2. 液体培养基配方 | 第53页 |
| 4.1.3. 实验仪器与试剂 | 第53页 |
| 4.1.3.1. 主要试剂和材料 | 第53页 |
| 4.1.3.2. 主要实验仪器 | 第53页 |
| 4.1.4. 实验设计 | 第53-54页 |
| 4.1.5. 样品的测定与数据分析 | 第54页 |
| 4.2. 结果与讨论 | 第54-58页 |
| 4.2.1. 不同PFOA浓度下排硫硫杆菌(thiobacillus thioparus)生长曲线的测定 | 第54-55页 |
| 4.2.2. 不同PFOA浓度下脱氮硫杆菌(thiobacillus denitrificans)生长曲线的测定 | 第55-56页 |
| 4.2.3. 排硫硫杆菌和脱氮硫杆菌在培养过程中的pH变化 | 第56-57页 |
| 4.2.4. 排硫硫杆菌和脱氮硫杆菌培养基中PFOA的残存量 | 第57-58页 |
| 4.3. 小结 | 第58-60页 |
| 5. 结论与展望 | 第60-62页 |
| 5.1. 结论 | 第60页 |
| 5.1.1. PFOA对小清河沉积物细菌群落结构的影响 | 第60页 |
| 5.1.2. PFOA对T. thioparus和T. denitrificans生长的影响 | 第60页 |
| 5.2. 创新点 | 第60-61页 |
| 5.3. 展望 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-74页 |
| 个人简介 | 第74-76页 |
| 导师简介 | 第76-78页 |
| 致谢 | 第78页 |
