| 中文摘要 | 第3-5页 |
| 英文摘要 | 第5-6页 |
| 中英文对照表 | 第10-11页 |
| 1 绪论 | 第11-15页 |
| 1.1 研究背景 | 第11-13页 |
| 1.2 课题提出 | 第13页 |
| 1.3 研究内容 | 第13-14页 |
| 1.3.1 脑片应力加载培养体系构建 | 第13页 |
| 1.3.2 应力介导脑片损伤 | 第13-14页 |
| 1.3.3 应力介导神经元损伤评价 | 第14页 |
| 1.4 技术路线 | 第14-15页 |
| 2 脑片应力加载培养体系构建 | 第15-27页 |
| 2.1 引言 | 第15页 |
| 2.2 主要实验材料与仪器 | 第15-16页 |
| 2.2.1 实验试剂与材料 | 第15-16页 |
| 2.2.2 实验仪器设备 | 第16页 |
| 2.3 实验方法 | 第16-20页 |
| 2.3.1 脑片培养实验 | 第16-18页 |
| 2.3.2 乳酸脱氢酶检测 | 第18-19页 |
| 2.3.3 PCR荧光定量检测 | 第19-20页 |
| 2.4 实验结果与讨论 | 第20-26页 |
| 2.4.1 脑片应力加载培养体系构建 | 第20-21页 |
| 2.4.2 换液时间与最佳活性期 | 第21-23页 |
| 2.4.3 应力大小选择 | 第23-25页 |
| 2.4.4 应力加载下脑片活性验证 | 第25-26页 |
| 2.5 小结 | 第26-27页 |
| 3 应力介导脑片损伤 | 第27-43页 |
| 3.1 引言 | 第27页 |
| 3.2 主要实验材料 | 第27-29页 |
| 3.2.1 实验试剂与材料 | 第27-28页 |
| 3.2.2 实验仪器设备 | 第28页 |
| 3.2.3 试剂配置 | 第28-29页 |
| 3.3 实验方法 | 第29-31页 |
| 3.3.1 免疫荧光染色 | 第29页 |
| 3.3.2 Western blot实验 | 第29-31页 |
| 3.3.3 荧光定量PRC实验 | 第31页 |
| 3.3.4 Ca~(2+)荧光探针 | 第31页 |
| 3.4 实验结果与讨论 | 第31-40页 |
| 3.4.1 应力介导脑片活性表达 | 第31-34页 |
| 3.4.2 应力介导相关通道蛋白表达 | 第34-39页 |
| 3.4.3 应力加载影响细胞内Ca~(2+)变化 | 第39-40页 |
| 3.5 小结 | 第40-43页 |
| 4 应力介导神经元损伤评价 | 第43-51页 |
| 4.1 引言 | 第43页 |
| 4.2 主要实验材料 | 第43-44页 |
| 4.2.1 实验试剂与材料 | 第43-44页 |
| 4.2.2 实验仪器设备 | 第44页 |
| 4.3 实验方法 | 第44-46页 |
| 4.3.1 相关溶液配制 | 第44页 |
| 4.3.2 细胞培养 | 第44-45页 |
| 4.3.3 细胞应力加载 | 第45页 |
| 4.3.4 LDH检测 | 第45页 |
| 4.3.5 免疫荧光 | 第45-46页 |
| 4.4 实验结果与讨论 | 第46-49页 |
| 4.4.1 神经元LDH检测 | 第46页 |
| 4.4.2 应力响应蛋白与骨架结构蛋白表达 | 第46-49页 |
| 4.5 小结 | 第49-51页 |
| 5 结论与展望 | 第51-53页 |
| 5.1 全文主要结论 | 第51-52页 |
| 5.2 后续工作建议 | 第52-53页 |
| 6 文献综述 | 第53-63页 |
| 6.1 应力对神经元影响研究进展 | 第53-54页 |
| 6.2 神经元的力学微环境及力学特性 | 第54-56页 |
| 6.3 机械应力对神经元的影响 | 第56-60页 |
| 6.3.1 背根神经节（DRG） | 第56-58页 |
| 6.3.2 视网膜神经节细胞 | 第58-59页 |
| 6.3.3 大脑皮层神经元 | 第59页 |
| 6.3.4 海马神经元 | 第59-60页 |
| 6.3.5 神经干细胞 | 第60页 |
| 6.3.6 其他神经元和机械应力 | 第60页 |
| 6.4 结论与展望 | 第60-63页 |
| 致谢 | 第63-65页 |
| 参考文献 | 第65-73页 |
| 附录 | 第73页 |
| A 作者在攻读学位期间发表的论文目录 | 第73页 |
| B 作者在攻读硕士学位期间主持或参与的科研项目情况 | 第73页 |