| 中文摘要 | 第3-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 缩略词 | 第9-10页 |
| 目录 | 第10-13页 |
| 1 绪论 | 第13-61页 |
| 1.1 植物响应 UV-B 辐射的研究 | 第14-30页 |
| 1.1.1 UV-B 辐射对植物生理代谢的影响 | 第15-21页 |
| 1.1.2 植物体内 UV-B 受体 UVR8 的研究 | 第21-24页 |
| 1.1.3 UV-B 辐射导致植物细胞程序性死亡的发生 | 第24-26页 |
| 1.1.4 UV-B 辐射对植物细胞骨架的影响 | 第26-27页 |
| 1.1.5 UV-B 辐射对植物细胞周期的影响 | 第27-28页 |
| 1.1.6 UV-B 辐射与其它因子复合作用对植物的影响 | 第28-29页 |
| 1.1.7 植物响应 UV-B 辐射研究的展望 | 第29-30页 |
| 1.2 植物肌动蛋白的研究进展 | 第30-54页 |
| 1.2.1 细胞核内的肌动蛋白 | 第32-33页 |
| 1.2.2 肌动蛋白在植物体内功能的研究进展 | 第33-53页 |
| 1.2.3 植物肌动蛋白研究的展望 | 第53-54页 |
| 1.3 激光对生物影响的研究 | 第54-57页 |
| 1.3.1 激光的生物学效应机制 | 第54-55页 |
| 1.3.2 He-Ne 激光对动物细胞的影响 | 第55页 |
| 1.3.3 He-Ne 激光对微生物生理代谢的影响 | 第55-56页 |
| 1.3.4 He-Ne 激光对植物生理代谢的影响 | 第56-57页 |
| 1.4 量子点纳米颗粒对植物的影响 | 第57-58页 |
| 1.5 本研究的意义及主要研究内容 | 第58-61页 |
| 2 材料与方法 | 第61-73页 |
| 2.1 材料 | 第61页 |
| 2.2 技术方法 | 第61-71页 |
| 2.2.1 小麦种子的萌发 | 第61页 |
| 2.2.2 各处理组设置 | 第61页 |
| 2.2.3 UV-B 辐射处理 | 第61-62页 |
| 2.2.4 He-Ne 激光辐照处理 | 第62页 |
| 2.2.5 外源施加药物处理 | 第62页 |
| 2.2.6 小麦幼苗根长及根相对伸长率的测定 | 第62页 |
| 2.2.7 小麦细胞壁红外光谱检测粗提物的制备 | 第62-63页 |
| 2.2.8 小麦细胞壁果胶及总糖的检测 | 第63页 |
| 2.2.9 小麦根尖 IAA 粗提液的制备 | 第63页 |
| 2.2.10 小麦根尖 IAA 含量的测定 | 第63页 |
| 2.2.11 小麦根尖 IAA 氧化酶活性的测定 | 第63-64页 |
| 2.2.12 小麦原生质体的分离纯化 | 第64页 |
| 2.2.13 原生质体活力的检测 | 第64页 |
| 2.2.14 叶片细胞核的分离及纯化 | 第64-65页 |
| 2.2.15 叶绿素的测定 | 第65页 |
| 2.2.16 可溶性糖及丙二醛（MDA）的测定 | 第65页 |
| 2.2.17 可溶性蛋白的测定 | 第65页 |
| 2.2.18 小麦根尖 H_2O_2荧光探针的装载 | 第65-66页 |
| 2.2.19 超氧阴离子的测定 | 第66页 |
| 2.2.20 抗坏血酸含量的测定 | 第66页 |
| 2.2.21 肌动蛋白的提取及 western-blot 鉴定 | 第66-67页 |
| 2.2.22 细胞核内肌动蛋白的荧光标记 | 第67-68页 |
| 2.2.23 原生质体微丝骨架的荧光标记 | 第68页 |
| 2.2.24 根尖微丝原位荧光标记 | 第68页 |
| 2.2.25 染色体的荧光标记 | 第68页 |
| 2.2.26 图像观察及分析 | 第68-69页 |
| 2.2.27 小麦根总 RNA 的提取及检测 | 第69页 |
| 2.2.28 反转录 cDNA 的合成 | 第69页 |
| 2.2.29 半定量 PCR 及实时荧光定量 PCR 引物的设计与合成 | 第69-70页 |
| 2.2.30 实时荧光定量 PCR 引物扩增效率的检测 | 第70页 |
| 2.2.31 半定量 PCR 扩增及实时荧光定量 PCR 检测 | 第70-71页 |
| 2.2.32 CdTe 量子点的合成及表征 | 第71页 |
| 2.2.33 数据统计及分析 | 第71页 |
| 2.3 技术路线 | 第71-73页 |
| 3 结果 | 第73-135页 |
| 3.1 肌动蛋白参与了 UV-B 辐射导致的小麦“翘根”现象的发生 | 第73-95页 |
| 3.1.1 小麦幼苗“翘根”现象的发生 | 第73页 |
| 3.1.2 不同处理组中根长及根相对伸长率的变化 | 第73-74页 |
| 3.1.3 不同处理组中小麦种粒与水平面所成角度 | 第74-75页 |
| 3.1.4 不同处理组小麦幼根体内 H_2O_2的水平 | 第75-78页 |
| 3.1.5 小麦幼根细胞内 O_2-及 AsA 含量 | 第78-79页 |
| 3.1.6 不同处理组小麦幼根细胞壁提取物的红外检测 | 第79-80页 |
| 3.1.7 不同处理组小麦幼根细胞壁组分的变化 | 第80-81页 |
| 3.1.8 不同处理组 3 日龄小麦幼根中 IAA 含量及 IAA 氧化酶的活力 | 第81-82页 |
| 3.1.9 不同处理组 3 日龄小麦幼根细胞大小的比较 | 第82-85页 |
| 3.1.10 不同处理组小麦幼根过渡区细胞内 F-actin 的分布 | 第85-88页 |
| 3.1.11 不同处理组小麦幼根分生区细胞内 F-actin 的分布 | 第88-89页 |
| 3.1.12 外施 IAA 及 H_2O_2对小麦幼根过渡区细胞内 F-actin 聚合的影响 | 第89-90页 |
| 3.1.13 外施 IAA 及 H_2O_2对小麦幼根分生区细胞内 F-actin 聚合的影响 | 第90-91页 |
| 3.1.14 不同处理组小麦根原生质体内 F-actin 分布的影响 | 第91页 |
| 3.1.15 外源施加 IAA 及 H_2O_2对小麦根原生质体内 F-actin 分布的影响 | 第91-93页 |
| 3.1.16 小麦根细胞 F-actin 响应不同处理的形态统计 | 第93-95页 |
| 3.2 肌动蛋白参与了 UV-B 辐射导致的小麦根异常有丝分裂的发生 | 第95-117页 |
| 3.2.1 UV-B 辐射对小麦幼苗根尖细胞分裂的影响 | 第95-97页 |
| 3.2.2 间期小麦根尖分生区细胞中 F-actin 的分布及响应 UV-B 辐射的变化 | 第97-98页 |
| 3.2.3 前期小麦根尖分生区细胞中 F-actin 的分布及响应 UV-B 辐射的变化 | 第98-100页 |
| 3.2.4 中期小麦根尖分生区细胞中 F-actin 的分布及响应 UV-B 辐射的变化 | 第100-102页 |
| 3.2.5 后期小麦根尖分生区细胞中 F-actin 的分布及响应 UV-B 辐射的变化 | 第102-106页 |
| 3.2.6 末期小麦根尖分生区细胞中 F-actin 的分布及响应 UV-B 辐射的变化 | 第106-108页 |
| 3.2.7 小麦原生质体有丝分裂各时期 F-actin 的分布及响应 UV-B 辐射的变化 | 第108-112页 |
| 3.2.8 外施 CB 对小麦根尖分生区细胞中 F-actin 的分布的影响 | 第112-114页 |
| 3.2.9 外施 JAS 对小麦根尖分生区细胞中 F-actin 的分布的影响 | 第114-115页 |
| 3.2.10 外施 CB 对小麦原生质体中 F-actin 的分布的影响 | 第115-116页 |
| 3.2.11 外施 JAS 对小麦原生质体中 F-actin 的分布的影响 | 第116-117页 |
| 3.3 He-Ne 激光及 UV-B 辐射影响了小麦根细胞核内 F-actin 的分布 | 第117-120页 |
| 3.3.1 分离纯化小麦根细胞核 | 第117页 |
| 3.3.2 不同处理组小麦根细胞核内 F-actin 的分布 | 第117-119页 |
| 3.3.3 不同处理组小麦根细胞核内 F-actin 的相对含量 | 第119-120页 |
| 3.4 He-Ne 激光及 UV-B 辐射影响了小麦 actin 的含量及表达 | 第120-125页 |
| 3.4.1 不同处理组小麦 actin 蛋白的相对含量 | 第120-122页 |
| 3.4.2 不同处理组小麦根 RNA 的提取及检测 | 第122页 |
| 3.4.3 不同处理组小麦 ACTIN 基因的相对表达量 | 第122-125页 |
| 3.5 UV-B 辐射及 CdTe 量子点对小麦幼苗的影响 | 第125-135页 |
| 3.5.1 CdTe 量子点的合成 | 第125页 |
| 3.5.2 CdTe 量子点的表征 | 第125-126页 |
| 3.5.3 不同浓度 CdTe 量子点溶液对小麦幼苗的影响 | 第126页 |
| 3.5.4 不同剂量 UV-B 辐射对小麦幼苗的影响 | 第126-127页 |
| 3.5.5 不同处理组小麦幼苗根细胞内摄入 CdTe 量子点的检测 | 第127页 |
| 3.5.6 不同处理组中 5 日龄小麦幼苗的生长情况及叶绿素含量 | 第127-128页 |
| 3.5.7 不同处理组小麦幼苗中 Cd 的积累 | 第128-129页 |
| 3.5.8 不同处理组小麦体内活性氧成分的含量 | 第129页 |
| 3.5.9 不同处理组小麦抗氧化系统酶类活性的检测 | 第129-130页 |
| 3.5.10 不同处理组小麦幼苗根细胞内 CdTe 量子点的分布 | 第130-132页 |
| 3.5.11 不同处理组小麦细胞内发生细胞程序性死亡 | 第132-135页 |
| 4 讨论 | 第135-153页 |
| 4.1 植物根参与响应环境 UV-B 辐射 | 第135-141页 |
| 4.1.1 UV-B 辐射导致了“翘根”现象的发生 | 第135-138页 |
| 4.1.2 植物根细胞微管骨架参与响应 UV-B 辐射 | 第138-139页 |
| 4.1.3 植物根细胞微丝骨架参与响应 UV-B 辐射 | 第139-141页 |
| 4.2 UV-B 辐射导致小麦根细胞发生异常分裂的作用机制 | 第141-147页 |
| 4.2.1 植物细胞有丝分裂过程中肌动蛋白的作用机制 | 第142-144页 |
| 4.2.2 肌动蛋白参与了 UV-B 辐射导致的异常分裂现象的发生 | 第144-147页 |
| 4.3 植物细胞核内肌动蛋白的分布及可能的作用机制 | 第147页 |
| 4.4 UV-B 辐射对植物体内肌动蛋白及基因表达的影响 | 第147-148页 |
| 4.5 He-Ne 激光修复植物受 UV-B 辐射损伤的可能机制 | 第148-149页 |
| 4.6 CdTe 量子点及 UV-B 辐射对植物代谢影响的机制 | 第149-153页 |
| 5 结论 | 第153-155页 |
| 6 致谢 | 第155-157页 |
| 7 参考文献 | 第157-177页 |
| 8 附录 | 第177页 |
