中文摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
缩略词中英文对照 | 第7-10页 |
第一章 前言 | 第10-18页 |
1.1 精液中ROS种类及其来源 | 第10-11页 |
1.2 ROS与其防御系统 | 第11-13页 |
1.3 ROS对精子结构和功能的影响 | 第13-14页 |
1.4 精子氧化应激损伤的测定方法 | 第14-15页 |
1.5 ROS与辅助生殖技术 | 第15页 |
1.6 cGMP、ROS与辅助生殖技术 | 第15-18页 |
第二章 cGMP改善ROS诱导的精子氧化应激损伤的研究 | 第18-39页 |
2.1 材料和方法 | 第18-26页 |
2.1.1 主要仪器 | 第18-19页 |
2.1.2 主要试剂 | 第19页 |
2.1.3 研究对象 | 第19页 |
2.1.4 标本采集与处理 | 第19-20页 |
2.1.5 精子活力参数分析 | 第20-21页 |
2.1.6 伊红-Y染色法测定精子死亡率 | 第21页 |
2.1.7 流式细胞仪(FACS)及H2DCF-DA测定活性氧的产生 | 第21-22页 |
2.1.8 RT-PCR检测精子细胞抗氧化酶系的表达 | 第22-24页 |
2.1.9 AOT测定精子DNA的完整性 | 第24-25页 |
2.1.10 FITC-PSA测定精子顶体反应 | 第25-26页 |
2.1.11 统计学方法 | 第26页 |
2.2 结果 | 第26-35页 |
2.2.1 一氧化氮(NO)通过激活环鸟苷酸(cGMP)信号通路增加精子的活力 | 第26-27页 |
2.2.2 cGMP保护精子免受NO产生的氧化应激 | 第27-28页 |
2.2.3 cGMP在避免精子细胞死亡过程中的保护作用 | 第28-29页 |
2.2.4 cGMP在细胞的氧化还原反应平衡中起着重要的作用 | 第29-31页 |
2.2.5 cGMP保护精子免受H_2O_2产生的氧化应激 | 第31-32页 |
2.2.6 cGMP降低H_2O_2对精子DNA完整性的损伤 | 第32-33页 |
2.2.7 cGMP促进精子顶体反应的发生 | 第33-35页 |
2.3 讨论 | 第35-39页 |
第三章 结论与展望 | 第39-40页 |
3.1 主要结论 | 第39页 |
3.2 研究展望 | 第39-40页 |
参考文献 | 第40-44页 |
在学期间的研究成果 | 第44-45页 |
致谢 | 第45页 |