中文摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
缩略语 | 第11-15页 |
前言 | 第15-21页 |
研究现状、成果 | 第15-19页 |
研究目的、方法 | 第19-21页 |
一、创伤性脑损伤小鼠自身抗体的检测及心磷脂的促凝活性 | 第21-37页 |
1.1 对象和方法 | 第21-29页 |
1.1.1 实验动物、仪器 | 第21-22页 |
1.1.2 主要试剂 | 第22-23页 |
1.1.3 实验方法 | 第23-29页 |
1.1.4 统计学方法 | 第29页 |
1.2 结果 | 第29-34页 |
1.2.1 创伤性脑损伤后小鼠抗脑自身抗体的表达情况 | 第29-30页 |
1.2.2 创伤性脑损伤后小鼠抗心磷脂抗体的检测 | 第30-31页 |
1.2.3 创伤性脑损伤后小鼠凝血功能的改变 | 第31-32页 |
1.2.4 心磷脂的体外促凝作用 | 第32-33页 |
1.2.5 心磷脂的体内促凝作用 | 第33-34页 |
1.3 讨论 | 第34-36页 |
1.3.1 颅脑创伤后脑源性抗体的检测 | 第34-35页 |
1.3.2 心磷脂的促凝功能 | 第35-36页 |
1.4 小结 | 第36-37页 |
二、创伤性脑损伤小鼠外周血中mt MPs的含量及其促凝功能检测 | 第37-70页 |
2.1 对象和方法 | 第37-51页 |
2.1.1 实验动物、仪器 | 第37-39页 |
2.1.2 主要试剂 | 第39-41页 |
2.1.3 实验方法 | 第41-50页 |
2.1.4 统计学方法 | 第50-51页 |
2.2 结果 | 第51-64页 |
2.2.1 流式细胞术检测小鼠颅脑外伤后外周血mt MPs的释放 | 第51-54页 |
2.2.2 透射电镜检测小鼠创伤性脑损伤后外周血mt MPs的释放 | 第54-56页 |
2.2.3 mt MPs的体外提取和鉴定 | 第56-60页 |
2.2.4 mt MPs的体外促凝功能 | 第60-61页 |
2.2.5 mt MPs的体内促凝作用 | 第61-64页 |
2.3 讨论 | 第64-69页 |
2.3.1 MPs的生物学特性 | 第64-66页 |
2.3.2 MPs在TBI中的作用及其意义 | 第66页 |
2.3.3 mt MPs在TBI中的作用及其意义 | 第66-68页 |
2.3.4 TBI后MPs的清除 | 第68-69页 |
2.4 小结 | 第69-70页 |
三、mt MPs促凝机制的体外研究 | 第70-96页 |
3.1 对象和方法 | 第70-82页 |
3.1.1 实验动物、仪器 | 第70-71页 |
3.1.2 主要试剂 | 第71-74页 |
3.1.3 实验方法 | 第74-82页 |
3.1.4 统计学方法 | 第82页 |
3.2 结果 | 第82-91页 |
3.2.1 神经元和神经胶质细胞释放mt MPs的体外检测 | 第82-86页 |
3.2.2 mt MPs携带ROS的检测 | 第86-87页 |
3.2.3 mt MPs活化血小板的检测 | 第87-89页 |
3.2.4 mt MPs激活内皮细胞的检测 | 第89-91页 |
3.2.5 mt MPs对内皮细胞渗透性的影响 | 第91页 |
3.3 讨论 | 第91-94页 |
3.4 小结 | 第94-96页 |
四、微粒清除蛋白Lactadherin对mt MPs的作用 | 第96-105页 |
4.1 对象和方法 | 第96-99页 |
4.1.1 实验动物、仪器 | 第96-97页 |
4.1.2 主要试剂 | 第97页 |
4.1.3 实验方法 | 第97-99页 |
4.1.4 统计学方法 | 第99页 |
4.2 结果 | 第99-101页 |
4.2.1 微粒清除蛋白lactadherin对mt MPs促凝作用的影响 | 第99-100页 |
4.2.2 微粒清除蛋白lactadherin对mt MPs介导的小鼠死亡的影响 | 第100-101页 |
4.3 讨论 | 第101-103页 |
4.4 小结 | 第103-105页 |
全文结论 | 第105-106页 |
论文创新点 | 第106-107页 |
参考文献 | 第107-117页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第117-120页 |
综述 微粒与颅脑外伤后凝血功能障碍的研究进展 | 第120-135页 |
综述参考文献 | 第125-135页 |
致谢 | 第135-137页 |
个人简历 | 第137页 |