| 摘要 | 第3-6页 |
| abstract | 第6-9页 |
| 1 前言 | 第12-16页 |
| 2 材料与方法 | 第16-25页 |
| 2.1 材料 | 第16-17页 |
| 2.1.1 鱼藤酮、巴戟天与大鼠 | 第16页 |
| 2.1.2 脑部微透析设备与试剂 | 第16-17页 |
| 2.1.3 免疫组化设备与试剂 | 第17页 |
| 2.2 鱼藤酮与巴戟天给药方法 | 第17-18页 |
| 2.2.1 鱼藤酮腹腔注射剂的制备与给药方法 | 第17-18页 |
| 2.2.2 鱼藤酮乳油的制备与皮肤给药方法 | 第18页 |
| 2.2.3 巴戟天水提液的制备与给药方法 | 第18页 |
| 2.3 大鼠行为学研究 | 第18-20页 |
| 2.3.1 体重研究 | 第18页 |
| 2.3.2 姿态稳定性研究 | 第18-19页 |
| 2.3.3 前肢力量研究 | 第19页 |
| 2.3.4 第一步启动时长研究 | 第19页 |
| 2.3.5 自主站立研究 | 第19-20页 |
| 2.4 免疫组化研究 | 第20-21页 |
| 2.4.1 动物灌注固定取材--大脑免疫组化检测 | 第20页 |
| 2.4.2 组织石蜡包埋与切片 | 第20页 |
| 2.4.3 免疫组织化学染色程序 | 第20-21页 |
| 2.4.4 影像学分析 | 第21页 |
| 2.5 生物化学研究 | 第21-24页 |
| 2.5.1 脑部微透析探针导管的埋置 | 第21-22页 |
| 2.5.2 探针预处理与保存方法 | 第22-23页 |
| 2.5.3 使用微透析设备对大鼠脑中的多巴胺及其代谢物进行收集 | 第23-24页 |
| 2.5.4 探针回收率研究 | 第24页 |
| 2.5.5 使用HPLC-ECD法测定透析液中多巴胺及其代谢产物的含量 | 第24页 |
| 2.6 统计学分析 | 第24-25页 |
| 3 结果与分析 | 第25-45页 |
| 3.1 鱼藤酮透皮给药对大鼠死亡率的影响 | 第25页 |
| 3.2 行为学结果与分析 | 第25-31页 |
| 3.2.1 体重监测结果 | 第25-26页 |
| 3.2.2 姿态稳定性研究结果 | 第26-27页 |
| 3.2.3 前肢力量研究结果 | 第27-28页 |
| 3.2.4 静止启动第一步耗时研究结果 | 第28-30页 |
| 3.2.5 自主站立研究结果 | 第30-31页 |
| 3.3 免疫组织化学结果与分析 | 第31-36页 |
| 3.3.1 透皮给药与腹腔注射给药TH免疫组化光密度的结果 | 第31-33页 |
| 3.3.2 透皮给药天数TH免疫组化光密度的结果 | 第33-34页 |
| 3.3.3 α-syn免疫组化结果 | 第34-36页 |
| 3.4 生物化学结果与分析 | 第36-43页 |
| 3.4.1 脑部微透析探针回收率结果 | 第36-37页 |
| 3.4.2 透皮给药（24 h）对大鼠脑部纹状体神经递质的变化 | 第37-39页 |
| 3.4.3 透皮给药与腹腔注射给药大鼠脑部纹状体细胞外液中神经递质的变化 | 第39-41页 |
| 3.4.4 透皮给药天数与大鼠脑部纹状体细胞外液中神经递质的变化 | 第41-43页 |
| 3.5 巴戟对鱼藤酮脑神经损伤的保护作用研究 | 第43-45页 |
| 4 讨论 | 第45-51页 |
| 4.1 透皮给药与腹腔注射给药的大鼠PD模型 | 第45-49页 |
| 4.1.1 行为学指标 | 第46-47页 |
| 4.1.2 免疫组织化学指标 | 第47页 |
| 4.1.3 生物化学指标 | 第47-49页 |
| 4.2 巴戟天对大鼠PD模型的神经保护作用 | 第49-51页 |
| 5 结论 | 第51-52页 |
| 致谢 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-57页 |
| 附录A HPLC-ECD色谱图 | 第57-74页 |
| 附录B 仪器 | 第74-75页 |
