| 缩略语表 | 第5-6页 |
| 中文摘要 | 第6-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 前言 | 第12-14页 |
| 文献回顾 | 第14-22页 |
| 1 材料 | 第22-25页 |
| 1.1 实验动物 | 第22页 |
| 1.2 主要试剂和仪器 | 第22-25页 |
| 1.2.1 行为学实验主要试剂 | 第22页 |
| 1.2.2 行为学实验主要仪器 | 第22页 |
| 1.2.3 Western blot和免疫荧光实验主要试剂 | 第22-23页 |
| 1.2.4 Western blot和免疫荧光实验主要仪器 | 第23-24页 |
| 1.2.5 电生理主要试剂 | 第24-25页 |
| 1.2.6 电生理主要仪器 | 第25页 |
| 2 方法 | 第25-32页 |
| 2.1 实验动物分组处理 | 第25-26页 |
| 2.1.1 雷帕霉素诱发痛实验分组 | 第25-26页 |
| 2.1.2 尼古丁对正常小鼠作用实验分组 | 第26页 |
| 2.2 足底机械痛阈值检测 | 第26页 |
| 2.3 足底热刺痛检测 | 第26-27页 |
| 2.4 甩尾实验 | 第27页 |
| 2.5 Western blot检测 | 第27-29页 |
| 2.5.1 样品制备 | 第27页 |
| 2.5.2 SDS－PAGE电泳 | 第27-28页 |
| 2.5.3 转膜和封闭 | 第28页 |
| 2.5.4 免疫杂交 | 第28页 |
| 2.5.5 荧光检测 | 第28-29页 |
| 2.6 免疫荧光检测 | 第29-30页 |
| 2.6.1 脑片制备 | 第29页 |
| 2.6.2 荧光染色 | 第29-30页 |
| 2.7 电生理实验 | 第30-31页 |
| 2.7.1 ACC区脑片的制备 | 第30页 |
| 2.7.2 记录电极的拉制 | 第30-31页 |
| 2.7.3 全细胞膜片钳记录 | 第31页 |
| 2.8 统计学分析 | 第31-32页 |
| 3 结果 | 第32-43页 |
| 3.1 雷帕霉素诱导小鼠出现痛觉敏感反应 | 第32页 |
| 3.2 尼古丁可抑制雷帕霉素诱导的痛觉敏感反应 | 第32-35页 |
| 3.2.1 尼古丁对急性雷帕霉素诱导痛敏的抑制作用 | 第32-33页 |
| 3.2.2 尼古丁对慢性雷帕霉素处理诱发痛敏反应的作用 | 第33-34页 |
| 3.2.3 尼古丁对正常小鼠痛阈值的影响 | 第34-35页 |
| 3.3 尼古丁通过上调m TORC1信号通路表达调节痛敏 | 第35-40页 |
| 3.3.1 尼古丁抑制急性雷帕霉素诱导的痛敏 | 第35-36页 |
| 3.3.2 尼古丁抑制慢性雷帕霉素诱导的痛敏 | 第36-39页 |
| 3.3.3 尼古丁对正常小鼠m TORC1信号通路相关蛋白的影响 | 第39-40页 |
| 3.4 尼古丁抑制了雷帕霉素引起的神经元兴奋性增强 | 第40-41页 |
| 3.5 阻断 α4β2、α7n ACh R抑制尼古丁对雷帕霉素诱导痛敏的作用 | 第41-43页 |
| 4 讨论 | 第43-44页 |
| 小结 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-52页 |
| 个人简历与研究成果 | 第52-53页 |
| 致谢 | 第53页 |
