中文摘要 | 第4-7页 |
Abstract | 第7-9页 |
缩略语/符号说明 | 第12-14页 |
技术路线 | 第14-15页 |
前言 | 第15-18页 |
研究现状、成果 | 第15-16页 |
研究目的、方法 | 第16-18页 |
一、双水杨酸酯对ZDF大鼠糖脂代谢的干预效果 | 第18-34页 |
1.1 材料和方法 | 第18-19页 |
1.1.1 实验材料 | 第19页 |
1.1.2 试剂 | 第19页 |
1.1.3 仪器 | 第19页 |
1.2 实验方法 | 第19-21页 |
1.2.1 动物饲养及分组 | 第19页 |
1.2.2 给药方法及途径 | 第19-20页 |
1.2.3 口服葡萄糖耐量试验 | 第20页 |
1.2.4 ELISA法检测胰岛素及胰高血糖素 | 第20-21页 |
1.2.5 诊断标准 | 第21页 |
1.2.6 标本采集及留取 | 第21页 |
1.2.7 统计学分析 | 第21页 |
1.3 结果 | 第21-31页 |
1.3.1 不同周龄大鼠成模率比较 | 第21-22页 |
1.3.2 不同周龄大鼠进食量的变化 | 第22页 |
1.3.3 不同周龄大鼠体重的变化 | 第22-23页 |
1.3.4 不同周龄大鼠空腹血糖的变化 | 第23-24页 |
1.3.5 不同周龄大鼠OGTT变化 | 第24-26页 |
1.3.6 不同周龄大鼠葡萄糖曲线下面积变化 | 第26页 |
1.3.7 双水杨酸酯对大鼠脂代谢的影响 | 第26-27页 |
1.3.8 不同周龄大鼠胰岛功能及胰岛素抵抗的变化 | 第27-30页 |
1.3.9 双水杨酸酯安全性的评价 | 第30-31页 |
1.4 讨论 | 第31-33页 |
1.5 小结 | 第33-34页 |
二、双水杨酸酯通过调节ZDF大鼠肠道菌群紊乱预防2型糖尿病发生的机制探讨 | 第34-81页 |
2.1 材料和方法 | 第35-36页 |
2.1.1 实验材料 | 第35页 |
2.1.2 主要试剂 | 第35-36页 |
2.1.3 主要仪器 | 第36页 |
2.2 实验方法 | 第36-42页 |
2.2.1 大鼠粪便的留取 | 第36页 |
2.2.2 大鼠回肠标本的留取 | 第36页 |
2.2.3 大鼠粪便基因组DNA的提取及分析 | 第36-38页 |
2.2.4 苏木素-伊红染色 | 第38页 |
2.2.5 透射电镜 | 第38页 |
2.2.6 免疫组织化学染色 | 第38-39页 |
2.2.7 免疫荧光染色 | 第39-40页 |
2.2.8 RT-PCR步骤 | 第40-41页 |
2.2.9 统计分析 | 第41-42页 |
2.3 结果 | 第42-75页 |
2.3.1 不同周龄大鼠肠道细菌物种丰富度的比较 | 第42-48页 |
2.3.2 不同周龄大鼠菌门水平的比较 | 第48-55页 |
2.3.3 不同周龄大鼠菌属水平的比较 | 第55-64页 |
2.3.4 不同周龄大鼠回肠上清液脂多糖水平的差异 | 第64-65页 |
2.3.5 不同周龄大鼠病理结果 | 第65-68页 |
2.3.6 肠道粘膜渗漏标志物水平的变化 | 第68-70页 |
2.3.7 肠道粘膜炎症指标的变化 | 第70-72页 |
2.3.8 肠道粘膜巨噬细胞M1、M2表达量的变化 | 第72-75页 |
2.4 讨论 | 第75-80页 |
2.5 小结 | 第80-81页 |
结论 | 第81-82页 |
参考文献 | 第82-86页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第86-87页 |
综述 肠道菌群失调与2型糖尿病的关系 | 第87-96页 |
综述参考文献 | 第93-96页 |
致谢 | 第96-97页 |
个人简历 | 第97页 |