| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语/符号说明 | 第10-11页 |
| 前言 | 第11-17页 |
| 研究现状、成果 | 第11-16页 |
| 研究目的、方法 | 第16-17页 |
| 一、胶质瘤TJ905干细胞的分选与鉴定 | 第17-30页 |
| 1.1 对象和方法 | 第17-20页 |
| 1.1.1 实验试剂 | 第17页 |
| 1.1.2 实验仪器 | 第17-18页 |
| 1.1.3 细胞培养 | 第18页 |
| 1.1.4 胶质瘤TJ905干细胞分选 | 第18-19页 |
| 1.1.5 胶质瘤TJ905干细胞的免疫荧光染色 | 第19-20页 |
| 1.2 结果 | 第20-24页 |
| 1.2.1 CD133阳性细胞的分选 | 第20页 |
| 1.2.2 胶质瘤TJ905干细胞的鉴定 | 第20-24页 |
| 1.3 讨论 | 第24-29页 |
| 1.3.1 胶质瘤细胞与胶质瘤干细胞 | 第24-27页 |
| 1.3.2 胶质瘤干细胞的鉴定 | 第27-29页 |
| 1.4 小结 | 第29-30页 |
| 二、Livin-shRNA转染与细胞增殖活性检测 | 第30-49页 |
| 2.1 对象和方法 | 第30-35页 |
| 2.1.1 实验试剂 | 第30页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第30-31页 |
| 2.1.3 实验分组 | 第31页 |
| 2.1.4 转染方法 | 第31-32页 |
| 2.1.5 RT-PCR检测转染效率 | 第32-33页 |
| 2.1.6 CCK-8 检测细胞增殖活性 | 第33-34页 |
| 2.1.7 流式细胞术检测细胞周期改变 | 第34页 |
| 2.1.8 RT-PCR检测细胞内Caspase3、Caspase7 mRNA的变化 | 第34-35页 |
| 2.1.9 统计学处理 | 第35页 |
| 2.2 结果 | 第35-41页 |
| 2.2.1 Livin-shRNA对Livin mRNA表达的影响 | 第35页 |
| 2.2.2 Livin-shRNA对细胞增殖的影响 | 第35-36页 |
| 2.2.3 Livin-shRNA对细胞周期的影响 | 第36-37页 |
| 2.2.4 Livin-shRNA对Caspase3、Caspase7 m RNA表达的影响 | 第37-41页 |
| 2.3 讨论 | 第41-48页 |
| 2.3.1 RNA干扰技术与病毒载体 | 第41-43页 |
| 2.3.2 Livin基因与细胞凋亡 | 第43-46页 |
| 2.3.3 Livin基因与细胞周期 | 第46-48页 |
| 2.4 小结 | 第48-49页 |
| 三、裸鼠皮下种植瘤的建立与体内增殖活性检测 | 第49-63页 |
| 3.1 对象和方法 | 第49-52页 |
| 3.1.1 实验试剂和材料 | 第49页 |
| 3.1.2 皮下种植瘤的建立 | 第49-50页 |
| 3.1.3 种植瘤的病理学检测 | 第50-51页 |
| 3.1.4 RT-PCR检测Livin、Caspase3和Caspase7 mRNA的表达 | 第51-52页 |
| 3.2 结果 | 第52-59页 |
| 3.2.1 胶质瘤TJ905细胞种植瘤模型的建立及病理学特点 | 第52-54页 |
| 3.2.2 Livin-shRNA对胶质瘤TJ905细胞种植瘤模型的影响 | 第54页 |
| 3.2.3 Livin-shRNA对Livin、Caspase3和Caspase7 mRNA的影响 | 第54-59页 |
| 3.3 讨论 | 第59-62页 |
| 3.4 小结 | 第62-63页 |
| 结论 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-71页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第71-72页 |
| 综述 胶质瘤干细胞的研究现状 | 第72-83页 |
| 综述参考文献 | 第79-83页 |
| 致谢 | 第83页 |
