| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-19页 |
| 1.1 猕猴桃研究概况 | 第12-14页 |
| 1.1.1 猕猴桃的生物学特征 | 第12页 |
| 1.1.2 猕猴桃根的主要化学成分 | 第12-13页 |
| 1.1.3 猕猴桃根化学成分的生理功效 | 第13-14页 |
| 1.2 多糖研究进展 | 第14-17页 |
| 1.2.1 多糖简介 | 第14页 |
| 1.2.2 多糖提取，分离与纯化 | 第14-15页 |
| 1.2.3 多糖的生理活性 | 第15-17页 |
| 1.3 课题的研究目的、意义和主要研究内容 | 第17-19页 |
| 1.3.1 课题研究的目的和意义 | 第17页 |
| 1.3.2 课题主要研究内容 | 第17-19页 |
| 第二章 中华猕猴桃根的化学成分及其抗肿瘤活性 | 第19-24页 |
| 2.1 实验材料 | 第19-20页 |
| 2.1.1 原材料 | 第19页 |
| 2.1.2 实验试剂、耗材 | 第19页 |
| 2.1.3 实验细胞 | 第19页 |
| 2.1.4 实验仪器与设备 | 第19-20页 |
| 2.2 实验方法 | 第20-21页 |
| 2.2.1 猕猴桃根化学成分提取 | 第20页 |
| 2.2.2 乙醇提取物的硅胶柱层析粗分 | 第20-21页 |
| 2.2.3 MTT法测定抗肿瘤活性 | 第21页 |
| 2.3 结果与分析 | 第21-23页 |
| 2.3.1 化合物结构鉴定 | 第21-22页 |
| 2.3.2 抗肿瘤活性 | 第22-23页 |
| 2.4 本章小结 | 第23-24页 |
| 第三章 中华猕猴桃根多糖的提取、分离、纯化与性质研究 | 第24-36页 |
| 3.1 主要材料 | 第24-25页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第24页 |
| 3.1.2 实验试剂 | 第24-25页 |
| 3.1.3 主要仪器与设备 | 第25页 |
| 3.2 实验方法 | 第25-31页 |
| 3.2.1 中华猴桃根粗多糖提取 | 第25-26页 |
| 3.2.2 中华猴桃根多糖的纯化 | 第26-27页 |
| 3.2.3 Sephacryl S300纯化 | 第27页 |
| 3.2.4 猕猴桃根多糖的纯化过程 | 第27-28页 |
| 3.2.5 分子量测定 | 第28页 |
| 3.2.6 多糖化学组成分析 | 第28-30页 |
| 3.2.7 红外光谱分析 | 第30-31页 |
| 3.2.8 扫描电镜（SEM）分析 | 第31页 |
| 3.2.9 中性糖组成分析 | 第31页 |
| 3.3 实验结果与分析 | 第31-35页 |
| 3.3.1 中华猕猴桃根多糖的提取分离和纯化 | 第31页 |
| 3.3.2 分子量测定 | 第31-32页 |
| 3.3.3 化学成分分析 | 第32页 |
| 3.3.4 红外光谱分析 | 第32-34页 |
| 3.3.5 扫描电镜（SEM）分析 | 第34页 |
| 3.3.6 中性糖组成分析 | 第34-35页 |
| 3.4 本章小结 | 第35-36页 |
| 第四章 中华猕猴桃根多糖抗氧化、免疫调节活性研究 | 第36-44页 |
| 4.1 材料与设备 | 第36-37页 |
| 4.1.1 实验材料和实验细胞株 | 第36页 |
| 4.1.2 实验试剂 | 第36页 |
| 4.1.3 主要设备 | 第36-37页 |
| 4.2 实验方法 | 第37-39页 |
| 4.2.1 体外抗氧化活性实验 | 第37-38页 |
| 4.2.2 免疫调节活性 | 第38-39页 |
| 4.2.3 对巨噬细胞吞噬功能的影响 | 第39页 |
| 4.3 结果分析 | 第39-43页 |
| 4.3.1 DPPH自由基清除能力 | 第39-40页 |
| 4.3.2 对过氧化氢诱导的HEK293细胞氧化损伤的保护作用 | 第40-41页 |
| 4.3.3 免疫调剂活性 | 第41-43页 |
| 4.4 本章小结 | 第43-44页 |
| 第五章 结论 | 第44-46页 |
| 5.1 研究成果 | 第44页 |
| 5.2 创新点 | 第44-46页 |
| 参考文献 | 第46-51页 |
| 附图 | 第51-54页 |
| 致谢 | 第54-55页 |
| 个人简介 | 第55页 |