| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 1 前言 | 第10-20页 |
| 1.1 硒的研究概述 | 第10-12页 |
| 1.1.1 硒的分布及存在形式 | 第10页 |
| 1.1.2 硒对人体健康的影响 | 第10-11页 |
| 1.1.3 人体硒的需要量 | 第11页 |
| 1.1.4 富硒产品的开发与研究现状 | 第11-12页 |
| 1.2 硒多糖的研究概况 | 第12-16页 |
| 1.2.1 硒多糖的种类和来源 | 第12-13页 |
| 1.2.2 硒多糖分离和纯化 | 第13-14页 |
| 1.2.3 硒多糖的结构 | 第14-15页 |
| 1.2.4 硒多糖的生物活性 | 第15-16页 |
| 1.3 蛹虫草多糖的研究进展 | 第16-19页 |
| 1.3.1 蛹虫草多糖的提取和纯化 | 第16-17页 |
| 1.3.2 蛹虫草多糖的结构分析 | 第17页 |
| 1.3.3 蛹虫草多糖的生物活性研究 | 第17-18页 |
| 1.3.4 蛹虫草多糖的结构修饰方法研究 | 第18-19页 |
| 1.4 研究的目的、意义及主要内容 | 第19-20页 |
| 1.4.1 研究目的和意义 | 第19页 |
| 1.4.2 研究的主要内容 | 第19-20页 |
| 2 材料和方法 | 第20-35页 |
| 2.1 实验材料、试剂与仪器 | 第20-22页 |
| 2.1.1 实验原料 | 第20页 |
| 2.1.2 实验药品和试剂 | 第20-21页 |
| 2.1.3 实验仪器和设备 | 第21-22页 |
| 2.2 蛹虫草多糖的提取 | 第22-23页 |
| 2.3 蛹虫草多糖硒化条件的研究 | 第23-24页 |
| 2.3.1 反应温度 | 第23页 |
| 2.3.2 反应时间 | 第23页 |
| 2.3.3 Na_2SeO_3溶液添加量 | 第23页 |
| 2.3.4 BaCl_2 | 第23页 |
| 2.3.5 硒化修饰正交试验 | 第23-24页 |
| 2.4 硒含量测定和得率的计算 | 第24-25页 |
| 2.4.1 原理 | 第24页 |
| 2.4.2 样品前处理 | 第24页 |
| 2.4.3 标准曲线的配制 | 第24页 |
| 2.4.4 样品中硒含量测定 | 第24-25页 |
| 2.4.5 硒化多糖得率的计算 | 第25页 |
| 2.5 多糖的分子量分布 | 第25-26页 |
| 2.6 多糖的分离纯化 | 第26-27页 |
| 2.6.1 Sephadex G-100柱层析 | 第26页 |
| 2.6.2 超滤管选择与处理 | 第26-27页 |
| 2.7 硒化多糖的结构分析 | 第27-30页 |
| 2.7.1 多糖的比旋光度测定 | 第27页 |
| 2.7.2 全波长扫描 | 第27页 |
| 2.7.3 多糖的单糖组成分析 | 第27-28页 |
| 2.7.4 多糖的红外光谱分析 | 第28页 |
| 2.7.5 多糖的核磁共振分析 | 第28页 |
| 2.7.6 硒化多糖连接方式分析 | 第28-29页 |
| 2.7.7 多糖的刚果红试验 | 第29页 |
| 2.7.8 多糖微观结构分析 | 第29-30页 |
| 2.7.9 原子力显微镜(AFM) | 第30页 |
| 2.8 硒化多糖生物活性研究 | 第30-35页 |
| 2.8.1 CPS-I和SeCPS-I的体外抗氧化活性研究 | 第30-32页 |
| 2.8.2 体外抗肿瘤细胞增殖抑制实验 | 第32-33页 |
| 2.8.3 硒化多糖抑制肿瘤细胞的作用 | 第33-34页 |
| 2.8.4 统计方法 | 第34-35页 |
| 3 结果与讨论 | 第35-64页 |
| 3.1 原子荧光法测定硒含量 | 第35页 |
| 3.2 蛹虫草多糖的硒化条件优化 | 第35-41页 |
| 3.2.1 反应温度对硒化修饰结果的影响 | 第35-36页 |
| 3.2.2 反应时间对硒化修饰结果的影响 | 第36-37页 |
| 3.2.3 Na_2SeO_3溶液添加量对硒化修饰结果的影响 | 第37-38页 |
| 3.2.4 BaCl_2对硒化修饰结果的影响 | 第38-40页 |
| 3.2.5 方差分析 | 第40-41页 |
| 3.3 多糖含量分析 | 第41-42页 |
| 3.3.1 苯酚-硫酸法测定总糖含量 | 第41页 |
| 3.3.2 DNS法测定还原糖含量 | 第41-42页 |
| 3.4 多糖的纯化和结构分析 | 第42-57页 |
| 3.4.1 多糖的提取和纯化 | 第42-43页 |
| 3.4.2 多糖含量测定 | 第43页 |
| 3.4.3 多糖的分子量与硒含量测定 | 第43-46页 |
| 3.4.4 多糖的单糖组成分析 | 第46-47页 |
| 3.4.5 多糖的比旋光度分析 | 第47页 |
| 3.4.6 全波长扫描 | 第47页 |
| 3.4.7 多糖的红外光谱分析 | 第47-48页 |
| 3.4.8 多糖的核磁共振图谱分析 | 第48-51页 |
| 3.4.9 CPS-I和SeCPS-I连接方式分析 | 第51-56页 |
| 3.4.10 刚果红试验 | 第56-57页 |
| 3.5 冻干多糖扫描电镜形态观察 | 第57-58页 |
| 3.6 原子力显微镜(AFM)观察 | 第58-59页 |
| 3.7 硒化多糖生物活性研究 | 第59-64页 |
| 3.7.1 CPS-I和SeCPS-I的体外抗氧化活性 | 第59-61页 |
| 3.7.2 CPS-I和SeCPS-I的体外抗肿瘤活性 | 第61-64页 |
| 4 结论 | 第64-65页 |
| 5 展望 | 第65-66页 |
| 6 致谢 | 第66-67页 |
| 7 参考文献 | 第67-71页 |
