| 英文缩略与说明 | 第8-10页 |
| 中文摘要 | 第10-12页 |
| 英文摘要 | 第12-14页 |
| 前言 | 第15-18页 |
| 第一部分 大鼠胚胎皮质神经干细胞体外原代培养方法的研究 | 第18-33页 |
| 1. 材料与方法 | 第18-24页 |
| 1.1 实验材料与试剂 | 第18-20页 |
| 1.2 常用实验试剂与实验方法 | 第20-22页 |
| 1.3 实验动物 | 第22页 |
| 1.4 大鼠胚胎神经干细胞分离和培养 | 第22页 |
| 1.5 神经干细胞的传代培养 | 第22-23页 |
| 1.6 神经干细胞生长曲线的绘制 | 第23页 |
| 1.7 神经干细胞免疫荧光鉴定 | 第23页 |
| 1.8 神经干细胞分化潜能的鉴定 | 第23-24页 |
| 1.9 统计学分析 | 第24页 |
| 2. 结果 | 第24-29页 |
| 2.1 神经干细胞的生物学特性 | 第24-26页 |
| 2.2 神经干细胞的生长曲线 | 第26页 |
| 2.3 神经干细胞的鉴定 | 第26-27页 |
| 2.4 神经干细胞分化潜能的鉴定 | 第27-29页 |
| 3. 讨论 | 第29-32页 |
| 4. 结论 | 第32-33页 |
| 第二部分 大鼠胚胎神经干细胞体外三维培养模型构建 | 第33-49页 |
| 1. 材料与方法 | 第33-38页 |
| 1.1 实验材料与试剂 | 第33-35页 |
| 1.2 常用实验试剂与实验方法 | 第35-36页 |
| 1.3 实验动物 | 第36页 |
| 1.4 大鼠胚胎神经干细胞分离和培养 | 第36-37页 |
| 1.5 神经干细胞在三维胶原凝胶中培养 | 第37页 |
| 1.6 三维胶原凝胶中神经干细胞传代培养 | 第37页 |
| 1.7 神经突起长度的测量 | 第37页 |
| 1.8 三维胶原凝胶中神经干细胞分化特性检测 | 第37-38页 |
| 1.9 免疫荧光 | 第38页 |
| 1.10 统计学处理 | 第38页 |
| 2. 结果 | 第38-46页 |
| 2.1 胶原凝胶三维培养神经干细胞 | 第38-39页 |
| 2.2 神经突起的长度测量 | 第39页 |
| 2.3 胶原凝胶三维培养神经干细胞鉴定 | 第39-43页 |
| 2.4 胶原凝胶三维培养对神经干细胞分化潜能的影响 | 第43-46页 |
| 3. 讨论 | 第46-48页 |
| 4. 结论 | 第48-49页 |
| 第三部分 控释细胞因子的胶原凝胶与神经干细胞的生物相容性 | 第49-63页 |
| 1.材料与方法 | 第49-55页 |
| 1.1 实验材料与试剂 | 第49-51页 |
| 1.2. 常用实验试剂与实验方法 | 第51-52页 |
| 1.3 实验动物 | 第52页 |
| 1.4 大鼠胚胎神经干细胞分离和培养 | 第52-53页 |
| 1.5 构建细胞因子缓释胶原凝胶支架 | 第53页 |
| 1.6 实验分组 | 第53页 |
| 1.7 细胞因子缓释胶原凝胶支架体外释放检测 | 第53页 |
| 1.8 细胞活力测定 | 第53-54页 |
| 1.9 神经突起长度的测量 | 第54页 |
| 1.10 各组神经干细胞分化特性 | 第54页 |
| 1.11 免疫荧光 | 第54-55页 |
| 1.12 统计学处理 | 第55页 |
| 2. 结果 | 第55-60页 |
| 2.1 神经干细胞的悬浮培养和鉴定 | 第55-56页 |
| 2.2 缓释支架材料上细胞因子的释放曲线 | 第56-57页 |
| 2.3 细胞活力检测 | 第57页 |
| 2.4 神经突起的长度测量 | 第57-58页 |
| 2.5 各组神经干细胞分化潜能的测定 | 第58-60页 |
| 3.讨论 | 第60-63页 |
| 4.结论 | 第63页 |
| 参考文献 | 第63-70页 |
| 附录 | 第70-71页 |
| 致谢 | 第71-72页 |
| 综述 | 第72-83页 |
| 参考文献 | 第78-83页 |
