中文摘要 | 第7-9页 |
ABSTRACT | 第9-11页 |
英汉缩略词对照表 | 第12-14页 |
前言 | 第14-17页 |
第一章 HIV-1 受体的慢病毒载体的构建及鉴定 | 第17-36页 |
1 研究背景与目的 | 第17-18页 |
2 材料与方法 | 第18-28页 |
2.1 实验材料与仪器 | 第18页 |
2.1.1 主要实验仪器 | 第18页 |
2.1.2 主要实验试剂 | 第18页 |
2.2 实验方法 | 第18-27页 |
2.2.1 载体构建方法 | 第18-25页 |
2.2.2 慢病毒包装 | 第25-27页 |
2.3 统计学分析 | 第27-28页 |
3 结果 | 第28-33页 |
3.1 pLV[Exp]-EGFP/Neo-CMV>hCD4:T2A:hCCNT1:IRES:hCCR5慢病毒质粒载体结构图谱 | 第28-29页 |
3.2 慢病毒质粒阳性克隆测序结果 | 第29页 |
3.3 pLV[Exp]-EGFP/Neo-CMV>hCD4:T2A:hCCNT1:IRES:hCCR5全序列 | 第29-31页 |
3.4 293T细胞中慢病毒载体的荧光表达结果 | 第31页 |
3.5 hCD4/CCR5/cyclinT1基因的mRNA表达结果 | 第31-33页 |
4 讨论 | 第33-35页 |
5 结论 | 第35-36页 |
第二章 表达hCD4/CCR5/cyclinT1基因的小鼠白血病细胞模型的建立 | 第36-51页 |
1 研究背景与目的 | 第36-37页 |
2 材料与方法 | 第37-43页 |
2.1 实验材料与仪器 | 第37页 |
2.1.1 细胞株 | 第37页 |
2.1.2 主要实验仪器 | 第37页 |
2.1.3 主要实验试剂 | 第37页 |
2.2 实验方法 | 第37-42页 |
2.2.1 细胞的培养 | 第37-38页 |
2.2.2 慢病毒转染L615及L1210细胞 | 第38-39页 |
2.2.3 L615及L1210中hCD4、hCCR5和hcyclinT1 mRNA的qRT-PCR检测 | 第39-40页 |
2.2.4 L615及L1210中hCD4、hCCR5和hcyclinT1蛋白的Western blot检测 | 第40-42页 |
2.2.5 L615及L1210中h CD4、hCCR5和hcyclinT1荧光的免疫荧光检测 | 第42页 |
2.3 统计学分析 | 第42-43页 |
3 结果 | 第43-48页 |
3.1 最佳感染复数(MOI)的测定结果 | 第43页 |
3.2 hCD4/CCR5 /cyclin T1的mRNA表达结果 | 第43-45页 |
3.3 hCD4/CCR5/cyclinT1蛋白的表达结果 | 第45-46页 |
3.4 hCD4/CCR5/cyclinT1荧光的表达结果 | 第46-48页 |
4 讨论 | 第48-50页 |
5 结论 | 第50-51页 |
第三章 表达hCD4/CCR5/cyclinT1基因的小鼠白血病细胞模型的HIV-1 易感性验证 | 第51-65页 |
1 研究背景和目的 | 第51-52页 |
2 材料与方法 | 第52-58页 |
2.1 实验材料与仪器 | 第52页 |
2.1.1 主要实验材料 | 第52页 |
2.1.2 主要仪器设备 | 第52页 |
2.2 方法 | 第52-57页 |
2.2.1 病毒的选择与培养 | 第52-53页 |
2.2.2 HIV-1 感染成功转染慢病毒载体的L615及L1210细胞 | 第53-54页 |
2.2.3 qRT-PCR检测HIVRNA表达水平 | 第54-57页 |
2.3 统计学分析 | 第57-58页 |
3 结果 | 第58-62页 |
3.1 L615及L1210细胞进行HIV-1 感染后HIV-1RNA的表达结果 | 第58-62页 |
3.1.1 培养上清液中HIV-1RNA的表达结果 | 第58-60页 |
3.1.2 细胞内HIV-1RNA的表达结果 | 第60-62页 |
4 讨论 | 第62-64页 |
5 结论 | 第64-65页 |
结语 | 第65-66页 |
1 研究结论 | 第65页 |
2 研究展望 | 第65-66页 |
参考文献 | 第66-70页 |
综述 | 第70-77页 |
参考文献 | 第75-77页 |
攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第77-78页 |
致谢 | 第78页 |