| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 1 引言 | 第12-23页 |
| 1.1 研究背景 | 第12页 |
| 1.2 肌肉的解剖结构和功能 | 第12-13页 |
| 1.3 骨骼肌的损伤机理 | 第13页 |
| 1.4 损伤分类 | 第13页 |
| 1.5 肌肉挫伤病理学变化 | 第13-14页 |
| 1.6 炎症及修复阶段 | 第14-15页 |
| 1.7 细胞因子的调控 | 第15-17页 |
| 1.7.1 bFGF的发现与分布 | 第15-16页 |
| 1.7.2 bFGF作用机制 | 第16-17页 |
| 1.7.3 bFGF生物学作用 | 第17页 |
| 1.8 血管内皮生长因子概述 | 第17-18页 |
| 1.8.1 VEGF的发现与分布 | 第17页 |
| 1.8.2 VEGF作用机制 | 第17-18页 |
| 1.8.3 VEGF生物学作用 | 第18页 |
| 1.9 骨骼肌损伤的检测方法 | 第18-21页 |
| 1.9.1 超声诊断 | 第18-19页 |
| 1.9.2 红外热成像技术 | 第19-21页 |
| 1.9.3 核闪烁照相法 | 第21页 |
| 1.10 肌肉损伤治疗方法的研究进展 | 第21-22页 |
| 1.11 本论文研究内容及意义 | 第22-23页 |
| 2 急性软组织损伤马模型的建立 | 第23-28页 |
| 2.1 材料及方法 | 第23-24页 |
| 2.1.1 试验药物及试剂 | 第23页 |
| 2.1.2 主要仪器和设备 | 第23页 |
| 2.1.3 试验动物 | 第23页 |
| 2.1.4 试验方法 | 第23-24页 |
| 2.1.5 数据处理 | 第24页 |
| 2.2 结果与分析 | 第24-27页 |
| 2.2.1 损伤部位超声图像的观察 | 第24-25页 |
| 2.2.2 损伤后红外热成像温度变化 | 第25-26页 |
| 2.2.3 损伤部位肉眼观察 | 第26页 |
| 2.2.4 损伤部位肌肉切片光镜下观察 | 第26-27页 |
| 2.3 讨论 | 第27页 |
| 2.4 小结 | 第27-28页 |
| 3 ZD制剂在马软组织损伤模型的疗效评估 | 第28-35页 |
| 3.1 试验材料与方法 | 第28-29页 |
| 3.1.1 制剂材料 | 第28页 |
| 3.1.2 试验动物 | 第28页 |
| 3.1.3 主要仪器和设备 | 第28页 |
| 3.1.4 试验方法 | 第28-29页 |
| 3.1.5 数据分析 | 第29页 |
| 3.2 结果与分析 | 第29-33页 |
| 3.2.1 超声评价软组织损伤 | 第29-31页 |
| 3.2.2 红外热成像温度的变化 | 第31-32页 |
| 3.2.3 局部肿胀观察 | 第32-33页 |
| 3.3 讨论 | 第33-34页 |
| 3.3.1 肌肉超声回声的变化 | 第33页 |
| 3.3.2 红外热成像 | 第33-34页 |
| 3.3.3 临床观察 | 第34页 |
| 3.4 小结 | 第34-35页 |
| 4 ZD制剂对马软组织损伤模型修复的研究 | 第35-43页 |
| 4.1 材料与方法 | 第35-36页 |
| 4.1.1 实验仪器 | 第35页 |
| 4.1.2 试验设备 | 第35页 |
| 4.1.3 主要试剂配置 | 第35页 |
| 4.1.4 试验动物分组与模型构建 | 第35页 |
| 4.1.5 标本收集及处理 | 第35页 |
| 4.1.6 肌肉病理组织切片制作 | 第35-36页 |
| 4.1.7 免疫组化制作 | 第36页 |
| 4.1.8 图像采集与分析 | 第36页 |
| 4.2 结果与分析 | 第36-40页 |
| 4.2.1 形态学观察 | 第36-39页 |
| 4.2.2 ZD制剂对肌肉组织中VEGF表达的影响 | 第39-40页 |
| 4.2.3 ZD制剂对肌肉组织中bFGF表达的影响 | 第40页 |
| 4.3 讨论 | 第40-42页 |
| 4.3.1 ZD制剂对肌肉组织形态学中的修复 | 第41页 |
| 4.3.2 VEGF对软组织损伤的影响 | 第41页 |
| 4.3.3 bFGF对软组织损伤的影响 | 第41-42页 |
| 4.4 小结 | 第42-43页 |
| 5 总结 | 第43-44页 |
| 致谢 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-52页 |
| 附录 | 第52-61页 |
| 作者简介 | 第61页 |