| 致谢 | 第5-6页 |
| 前言 | 第6-8页 |
| 中文摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 缩略词表 | 第12-15页 |
| 第一部分 Con A诱导肝损伤早期miRNAs表达谱特征及生物信息学分析 | 第15-28页 |
| 引言 | 第15-16页 |
| 1.1 仪器和试剂 | 第16-17页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第16页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第16-17页 |
| 1.1.3 主要仪器 | 第17页 |
| 1.2 实验方法 | 第17-18页 |
| 1.2.1 实验模型构建 | 第17页 |
| 1.2.2 miRNA表达谱芯片检测 | 第17-18页 |
| 1.2.3 miRNA表达变化的qRT-PCR验证 | 第18页 |
| 1.2.4 miRNA靶基因的生物信息学预测和分析 | 第18页 |
| 1.3 实验结果 | 第18-25页 |
| 1.3.1 miRNA芯片筛选和数据分析 | 第18-19页 |
| 1.3.2 针对miRNAs设计qRT-PCR发夹结构引物 | 第19-23页 |
| 1.3.3 miRNA表达水平的qRT-PCR验证 | 第23-24页 |
| 1.3.4 靶基因的预测和同源分析 | 第24-25页 |
| 1.4 讨论 | 第25-27页 |
| 1.5 小结 | 第27-28页 |
| 第二部分 炎症因子微环境中miR-674-5p对5-LO转录后调控 | 第28-36页 |
| 引言 | 第28页 |
| 2.1 仪器和试剂 | 第28-31页 |
| 2.1.1 实验细胞 | 第28页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第28-29页 |
| 2.1.3 常用溶液配制 | 第29-30页 |
| 2.1.4 主要仪器 | 第30-31页 |
| 2.2 实验方法 | 第31-33页 |
| 2.2.1 细胞培养 | 第31页 |
| 2.2.2 miRNA-674-5p类似物的转染 | 第31页 |
| 2.2.3 炎症因子刺激后5-LO表达水平的检测 | 第31-33页 |
| 2.2.3.1 蛋白样本收集 | 第31-32页 |
| 2.2.3.2 蛋白浓度测定 | 第32页 |
| 2.2.3.3 蛋白免疫印迹 | 第32页 |
| 2.2.3.4 数据分析 | 第32-33页 |
| 2.3 实验结果 | 第33-34页 |
| 2.3.1 Hepa1-6小鼠肝细胞中“miR-674-5p/5-LO”的负向调控 | 第33页 |
| 2.3.2 HepG2人肝细胞中“miR-674-5p/5-LO”的负向调控 | 第33-34页 |
| 2.4 讨论 | 第34-35页 |
| 2.5 小结 | 第35-36页 |
| 全文结论 | 第36-37页 |
| 论文创新点 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-42页 |
| 附录 | 第42-45页 |
| 综述 | 第45-62页 |
| 参考文献 | 第56-62页 |
| 作者简历及在学期间所获得的科研成果 | 第62-63页 |
