| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 缩略语 | 第7-11页 |
| 1 前言 | 第11-17页 |
| 2 材料与方法 | 第17-33页 |
| ·材料与试剂 | 第17-21页 |
| ·材料 | 第17页 |
| ·试剂 | 第17-19页 |
| ·溶液配制 | 第19页 |
| ·主要仪器设备 | 第19-21页 |
| ·试验方法 | 第21-31页 |
| ·筛选典型西尼罗病毒株 NY99-crow-V76/1 | 第21页 |
| ·重组质粒 PCDNA5-WNV-JME 的构建 | 第21-22页 |
| ·质粒的制备 | 第22-24页 |
| ·293T 细胞培养和重组质粒瞬时转染 293T 细胞 | 第24-27页 |
| ·构建的重组质粒瞬时转染 293T 细胞 | 第27-28页 |
| ·大规模构建的重组质粒瞬时转染 293T 细胞 | 第28页 |
| ·重组蛋白的表达鉴定 | 第28-29页 |
| ·重组蛋白的纯化 | 第29-31页 |
| ·试剂盒的评价 | 第31页 |
| ·血清学检测 | 第31-33页 |
| ·自制试剂盒检测入境人员血清 | 第31-32页 |
| ·FocusWNV-IgG 检测试剂盒检测入境人员血清 | 第32页 |
| ·Panbio 捕获 ELISA 检测登格 IgG 试剂盒检测 WNV 抗体阳性血清 | 第32-33页 |
| 3 结果与分析 | 第33-51页 |
| ·筛选典型西尼罗病毒株 NY99-crow-V76/1 | 第33-34页 |
| ·重组质粒 PCDNA5-WNV-JME 的构建 | 第34-36页 |
| ·融合 PCR 扩增 WNV-JME 基因片段 | 第34-35页 |
| ·pCDNA5-WNV-JME 重组质粒的鉴定 | 第35-36页 |
| ·重组蛋白的表达鉴定及纯化 | 第36-38页 |
| ·间接免疫荧光试验 | 第36-37页 |
| ·表达产物纯化 | 第37-38页 |
| ·间接 ELISA 法 | 第38-39页 |
| ·检测西尼罗病毒抗体的间接 ELISA 方法的建立 | 第39-41页 |
| ·封闭液的选择 | 第39页 |
| ·样品稀释液的选择 | 第39-40页 |
| ·临界值的确定 | 第40-41页 |
| ·检测西尼罗病毒抗体的间接 ELISA 方法的评估 | 第41-43页 |
| ·敏感性与特异性实验 | 第41-42页 |
| ·重复性与稳定性实验 | 第42页 |
| ·血清样本初步检测 | 第42-43页 |
| ·入境人员血清调查 | 第43-51页 |
| ·血清样本信息 | 第43-45页 |
| ·重组蛋白包被 ELISA-Lab 与 FOCUS WNV IgG 检测试剂盒检测结果 | 第45页 |
| ·利用 Dengue IgG Capture ELISA 试剂盒进一步筛选检测样品盘 | 第45-47页 |
| ·抗体阳性率分布情况 | 第47-51页 |
| 4 讨论 | 第51-57页 |
| 5 结论 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-64页 |
| 附图表 | 第64-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第67-68页 |
