摘要 | 第1-4页 |
Abstract | 第4-7页 |
第一章 文献综述 | 第7-19页 |
·独一味研究概况 | 第7-9页 |
·独一味生物特征和地域分布 | 第7-8页 |
·独一味研究现状 | 第8-9页 |
·独一味化学成分研究 | 第8页 |
·独一味药理研究 | 第8-9页 |
·植物遗传多样性研究概况 | 第9-16页 |
·形态水平研究 | 第11页 |
·细胞水平研究 | 第11-12页 |
·蛋白质分子水平研究 | 第12-13页 |
·等位酶水平研究 | 第12-13页 |
·蛋白质组水平研究 | 第13页 |
·DNA 分子水平研究 | 第13-16页 |
·RFLR 标记技术 | 第14页 |
·RAPD 标记技术 | 第14-15页 |
·AFLP 标记技术 | 第15页 |
·SSR 标记技术 | 第15-16页 |
·ISSR 标记技术 | 第16页 |
·其他方法 | 第16页 |
·本文的研究意义 | 第16-18页 |
·技术路线 | 第18-19页 |
第二章 独一味 ISSR-PCR 反应体系的优化与建立 | 第19-33页 |
·引言 | 第19页 |
·实验材料仪器和方法 | 第19-25页 |
·实验材料 | 第19页 |
·实验的主要仪器 | 第19-20页 |
·主要试剂以及配制 | 第20页 |
·实验方法 | 第20-25页 |
·独一味基因组 DNA 的提取 | 第20-21页 |
·琼脂糖凝胶电泳的配置 | 第21页 |
·ISSR-PCR 反应体系正交设计 | 第21-23页 |
·单因素交叉试验 | 第23-24页 |
·最佳退火温度的筛选 | 第24-25页 |
·扩增程序循环次数的确定 | 第25页 |
·结果与分析 | 第25-31页 |
·基因组 DNA 检测结果与分析 | 第25-26页 |
·正交设计试验结果与分析 | 第26-27页 |
·单因素交叉试验结果与分析 | 第27-29页 |
·模板 DNA 量对 ISSR-PCR 扩增的影响 | 第27-28页 |
·引物浓度对 ISSR-PCR 扩增的影响 | 第28页 |
·Taq DNA 聚合酶对 ISSR-PCR 扩增的影响 | 第28页 |
·Mg~(2+)浓度对 ISSR-PCR 扩增的影响 | 第28-29页 |
·dNTP 浓度对 ISSR-PCR 扩增的影响 | 第29页 |
·退火温度的确立 | 第29-30页 |
·循环次数的确立 | 第30-31页 |
·小结 | 第31-33页 |
第三章 玉树地区独一味 ISSR 遗传多样性分析 | 第33-51页 |
·引言 | 第33页 |
·材料来源以及实验方法 | 第33-39页 |
·材料的来源 | 第33-35页 |
·独一味总基因组 DNA 提取 | 第35页 |
·引物的筛选 | 第35-36页 |
·ISSR-PCR 群体扩增 | 第36-39页 |
·数据处理结果与分析 | 第39-48页 |
·独一味遗传多样性结果与分析 | 第39-40页 |
·独一味遗传多样性数据处理 | 第39页 |
·独一味遗传多样性结果与分析 | 第39-40页 |
·独一味的遗传结构分析 | 第40-41页 |
·独一味繁育系统分析 | 第41页 |
·独一味遗传距离分析 | 第41-42页 |
·聚类图谱分析 | 第42-48页 |
·独一味种群 CY 的个体聚类(见图 3.7) | 第43-44页 |
·独一味种群 HB 的个体聚类(见图 3.8) | 第44页 |
·独一味种群 XQ 的个体聚类(见图 3.9) | 第44-45页 |
·独一味种群 ZY 的个体聚类(见图 3.10) | 第45页 |
·独一味种群 BZ 的个体聚类(见图 3.11) | 第45-46页 |
·独一味种群 BX 的个体聚类(见图 3.12) | 第46页 |
·独一味种群 HT 的个体聚类(见图 3.13) | 第46-47页 |
·独一味种群 SP 的个体聚类(见图 3.14) | 第47页 |
·独一味种群 CF 的个体聚类(见图 3.15) | 第47-48页 |
·独一味种群 CD 的个体聚类(见图 3.16) | 第48页 |
·讨论 | 第48-51页 |
·独一味种群遗传多样性 | 第48-50页 |
·独一味种群遗传结构 | 第50-51页 |
第四章 结论与展望 | 第51-53页 |
·结论 | 第51-52页 |
·展望 | 第52-53页 |
参考文献 | 第53-58页 |
致谢 | 第58-59页 |
个人简历 | 第59页 |