| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-11页 |
| 目录 | 第11-14页 |
| 英文缩写词表 | 第14-15页 |
| 前言 | 第15-17页 |
| 第一部分 Caco-2细胞单层模型的建立和确证 | 第17-23页 |
| 1 材料与方法 | 第17-18页 |
| ·仪器 | 第17页 |
| ·药品与试剂 | 第17-18页 |
| 2 实验方法 | 第18-20页 |
| ·溶液的配制 | 第18页 |
| ·细胞培养 | 第18页 |
| ·Caco-2细胞单层模型的建立 | 第18页 |
| ·细胞形态和功能的评价 | 第18-19页 |
| ·Caco-2细胞单层模型的评价 | 第19-20页 |
| 3 结果 | 第20-22页 |
| ·细胞形态学考察 | 第20-21页 |
| ·细胞P-gp表达考察 | 第21页 |
| ·Caco-2细胞单层模型的评价 | 第21-22页 |
| 4 讨论 | 第22-23页 |
| 第二部分 当归提取物及其有效成分、伏立康唑和伊曲康唑对Caco-2细胞毒性的实验 | 第23-27页 |
| 1 材料与方法 | 第23-24页 |
| ·仪器 | 第23页 |
| ·药品与试剂 | 第23-24页 |
| 2 实验方法 | 第24-25页 |
| ·溶液的配制 | 第24页 |
| ·MTT实验 | 第24-25页 |
| 3 结果 | 第25页 |
| 4 讨论 | 第25-27页 |
| 第三部分 当归有效成分对伏立康唑体外细胞转运的影响 | 第27-47页 |
| 第一章 HPLC测定转运和摄取实验中伏立康唑的浓度 | 第27-35页 |
| 1 仪器和材料 | 第27页 |
| ·仪器 | 第27页 |
| ·药品与试剂 | 第27页 |
| 2 实验方法 | 第27-30页 |
| ·标准溶液的配制 | 第27-28页 |
| ·HPLC的色谱条件 | 第28页 |
| ·样品处理 | 第28页 |
| ·方法学考察 | 第28-30页 |
| 3 结果 | 第30-34页 |
| ·方法的专属性 | 第30-31页 |
| ·标准曲线 | 第31页 |
| ·回收率 | 第31-32页 |
| ·精密度 | 第32-33页 |
| ·稳定性 | 第33-34页 |
| 4 讨论 | 第34-35页 |
| 第二章 当归有效成分对伏立康唑在Caco-2细胞单层模型中双向转运的影响 | 第35-42页 |
| 1 材料与仪器 | 第35页 |
| ·仪器 | 第35页 |
| ·药品与试剂 | 第35页 |
| 2 实验方法 | 第35-37页 |
| ·溶液配制 | 第35-36页 |
| ·实验分组 | 第36页 |
| ·按照第一部分的方法建立体外Caco-2细胞单层模型并进行验证 | 第36页 |
| ·药物跨膜转运实验 | 第36-37页 |
| ·样品中伏立康唑浓度的测定 | 第37页 |
| 3 数据处理 | 第37页 |
| 4 结果 | 第37-40页 |
| ·伏立康唑在Caco-2细胞单层膜型上的双向转运 | 第37-40页 |
| ·实验前后TEER值的改变情况 | 第40页 |
| 5 讨论 | 第40-42页 |
| 第三章 当归有效成分对伏立康唑在Caco-2细胞摄取的影响 | 第42-47页 |
| 1 材料与仪器 | 第42页 |
| ·仪器 | 第42页 |
| ·材料与试剂 | 第42页 |
| 2 实验方法 | 第42-43页 |
| ·细胞培养 | 第42页 |
| ·细胞摄取实验方案 | 第42页 |
| ·HPLC分析 | 第42-43页 |
| ·数据处理 | 第43页 |
| 3 结果 | 第43-45页 |
| ·时间对伏立康唑摄取的影响 | 第43页 |
| ·浓度对伏立康唑摄取的影响 | 第43-44页 |
| ·pH值对伏立康唑摄取的影响 | 第44-45页 |
| ·药物合用对伏立康唑摄取的影响 | 第45页 |
| 4 讨论 | 第45-47页 |
| 第四部分 当归有效成分对伊曲康唑体外细胞转运的影响 | 第47-65页 |
| 第一章 HPLC测定转运和摄取实验中伊曲康唑的浓度 | 第47-55页 |
| 1 仪器和材料 | 第47页 |
| ·仪器 | 第47页 |
| ·药品与试剂 | 第47页 |
| 2 实验方法 | 第47-50页 |
| ·标准溶液的配制 | 第47页 |
| ·HPLC的色谱条件 | 第47-48页 |
| ·样品处理 | 第48页 |
| ·方法学考察 | 第48-50页 |
| 3 结果 | 第50-53页 |
| ·方法的专属性 | 第50-51页 |
| ·标准曲线 | 第51页 |
| ·回收率 | 第51-52页 |
| ·精密度 | 第52-53页 |
| ·稳定性 | 第53页 |
| 4 讨论 | 第53-55页 |
| 第二章 当归有效成分对伊曲康唑在Caco-2细胞单层模型中双向转运的影响 | 第55-61页 |
| 1 材料与仪器 | 第55页 |
| ·仪器 | 第55页 |
| ·药品与试剂 | 第55页 |
| 2 实验方法 | 第55-56页 |
| ·溶液配制 | 第55-56页 |
| ·实验分组 | 第56页 |
| ·按照第一部分的方法建立体外Caco-2细胞单层模型并进行验证 | 第56页 |
| ·药物跨膜转运实验 | 第56页 |
| ·样品中伊曲康唑的测定 | 第56页 |
| 3 数据处理 | 第56页 |
| 4 结果 | 第56-59页 |
| ·伊曲康唑在Caco-2细胞单层膜型上的双向转运 | 第56-59页 |
| ·实验前后TEER值的改变情况 | 第59页 |
| 5 讨论 | 第59-61页 |
| 第三章 当归有效成分对伊曲康唑在Caco-2细胞摄取的影响 | 第61-65页 |
| 1 材料与仪器 | 第61页 |
| ·仪器 | 第61页 |
| ·材料与试剂 | 第61页 |
| 2 实验方法 | 第61-62页 |
| ·细胞培养 | 第61页 |
| ·细胞摄取实验方案 | 第61页 |
| ·HPLC分析 | 第61-62页 |
| ·数据处理 | 第62页 |
| 3 结果 | 第62-64页 |
| ·时间对伊曲康唑摄取的影响 | 第62页 |
| ·浓度对伊曲康唑摄取的影响 | 第62-63页 |
| ·pH值对伊曲康唑摄取的影响 | 第63页 |
| ·药物合用对伊曲康唑摄取的影响 | 第63-64页 |
| 4 讨论 | 第64-65页 |
| 总结与展望 | 第65-66页 |
| 结论 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-71页 |
| 综述 | 第71-84页 |
| 参考文献 | 第79-84页 |
| 致谢 | 第84-85页 |
| 攻读学位期间发表论文情况 | 第85页 |
