| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-8页 |
| 1 文献综述 | 第8-14页 |
| ·文蛤养殖现状及分子生物学研究进展 | 第8-10页 |
| ·我国文蛤养殖现状 | 第8-9页 |
| ·文蛤的分子生物学研究 | 第9-10页 |
| ·铜锌超氧化物歧化酶基因研究现状 | 第10-12页 |
| ·超氧化物歧化酶(superoxide dismutase, SOD)的发现与种类 | 第10-11页 |
| ·Cu/Zn-SOD 的结构特征 | 第11页 |
| ·Cu/Zn-SOD 的理化性质 | 第11-12页 |
| ·影响Cu/Zn-SOD 活性的因素 | 第12页 |
| ·本研究的意义 | 第12-14页 |
| 2 文蛤胞内铜锌超氧化物岐化酶基因的克隆与序列分析 | 第14-23页 |
| ·前言 | 第14页 |
| ·材料与方法 | 第14-15页 |
| ·材料 | 第14页 |
| ·方法 | 第14-15页 |
| ·结果与讨论 | 第15-22页 |
| ·结果 | 第15-21页 |
| ·讨论 | 第21-22页 |
| ·小结 | 第22-23页 |
| 3 文蛤胞内铜锌超氧化物歧化酶的时序表达与组织分布表达 | 第23-33页 |
| ·前言 | 第23页 |
| ·实验方法 | 第23-28页 |
| ·实验材料 | 第23-24页 |
| ·实验步骤 | 第24-26页 |
| ·Real-time PCR | 第26-28页 |
| ·结果与讨论 | 第28-32页 |
| ·小结 | 第32-33页 |
| 4 文蛤胞内铜锌超氧化物歧化酶的体外重组表达与活性鉴定 | 第33-47页 |
| ·前言 | 第33页 |
| ·载体构建 | 第33-36页 |
| ·引物设计 | 第33页 |
| ·构建克隆载体PMD-Mm-Cu/Zn-SOD | 第33-35页 |
| ·构建表达载体PET-Mm-Cu/Zn-SOD | 第35-36页 |
| ·诱导 | 第36-37页 |
| ·诱导培养 | 第36-37页 |
| ·超声破碎 | 第37页 |
| ·煮样 | 第37页 |
| ·蛋白电泳 | 第37-39页 |
| ·电泳液制备 | 第37页 |
| ·制胶（BIO-RAD） | 第37-38页 |
| ·电泳 | 第38页 |
| ·染色 | 第38页 |
| ·大量诱导 | 第38-39页 |
| ·蛋白纯化 | 第39-41页 |
| ·配制蛋白纯化所用Buffer | 第39页 |
| ·预处理 | 第39-40页 |
| ·过柱子 | 第40页 |
| ·透析 | 第40-41页 |
| ·重组表达蛋白活性测定 | 第41-42页 |
| ·纯化蛋白的定量 | 第41页 |
| ·酶活测定 | 第41-42页 |
| ·结果与讨论 | 第42-46页 |
| ·诱导表达结果与讨论 | 第42-44页 |
| ·活性测定结果与讨论 | 第44-45页 |
| ·温度及pH 对文蛤铜锌超氧化物歧化酶活性的影响 | 第45-46页 |
| ·小结 | 第46-47页 |
| 结论 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-51页 |
| 攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第51-52页 |
| 致谢 | 第52页 |
