| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-12页 |
| 第一章 Exendin-4的研究进展 | 第12-27页 |
| 1. Exendin-4的来源 | 第12-13页 |
| 2. Exendin-4的结构及与受体的结合 | 第13-15页 |
| 3. Exendin-4的生物活性及作用机制 | 第15-21页 |
| ·促进胰岛素分泌 | 第15-17页 |
| ·增强胰岛素敏感性 | 第17-18页 |
| ·抑制胰高血糖素分泌 | 第18页 |
| ·增加β-细胞数量 | 第18-20页 |
| ·抑制摄食 | 第20页 |
| ·其它活性 | 第20-21页 |
| 4. Exendin-4的改造和修饰 | 第21-24页 |
| ·氨基酸突变型衍生物 | 第21-22页 |
| ·截短型衍生物 | 第22页 |
| ·增补型衍生物 | 第22-23页 |
| ·修饰的衍生物 | 第23-24页 |
| ·引入保护肽 | 第24页 |
| 5. 本研究的意义和目的 | 第24-27页 |
| 第二章 Exendin-4衍生物E306的克隆、表达及分离纯化 | 第27-54页 |
| 前言 | 第27-28页 |
| 1. 材料 | 第28-30页 |
| ·质粒和菌种 | 第28页 |
| ·药品和试剂 | 第28-29页 |
| ·仪器设备 | 第29页 |
| ·常用溶液配制 | 第29-30页 |
| 2. 方法 | 第30-40页 |
| ·E306在大肠杆菌DH5α中的克隆 | 第30-36页 |
| ·E306融合蛋白的诱导表达 | 第36-38页 |
| ·E306多肽的分离纯化 | 第38-40页 |
| 3. 结果 | 第40-51页 |
| ·E306在大肠杆菌DH5α中的克隆 | 第40-44页 |
| ·E306融合蛋白的诱导表达 | 第44-46页 |
| ·E306多肽的分离纯化 | 第46-51页 |
| 4. 讨论 | 第51-54页 |
| 第三章 Exendin-4衍生物E306的性质研究 | 第54-69页 |
| 前言 | 第54-55页 |
| 1. 材料 | 第55-56页 |
| ·多肽样品 | 第55页 |
| ·药品和试剂 | 第55页 |
| ·仪器设备 | 第55-56页 |
| ·实验动物 | 第56页 |
| ·分析软件 | 第56页 |
| 2. 方法 | 第56-58页 |
| ·E306的生物活性检测 | 第56-57页 |
| ·E306的二级结构测定 | 第57-58页 |
| ·E306的稳定性分析 | 第58页 |
| 3. 结果 | 第58-67页 |
| ·E306的生物活性 | 第58-63页 |
| ·E306的二级结构 | 第63-65页 |
| ·E306的稳定性 | 第65-67页 |
| 4. 讨论 | 第67-69页 |
| 第四章 Exendin-4衍生物E306的Biotin修饰及修饰产物活性研究 | 第69-81页 |
| 前言 | 第69-70页 |
| 1. 材料 | 第70-71页 |
| ·样品及修饰剂 | 第70页 |
| ·主要试剂 | 第70页 |
| ·仪器和设备 | 第70-71页 |
| ·实验动物 | 第71页 |
| ·常用溶液的配制 | 第71页 |
| 2. 方法 | 第71-73页 |
| ·E306的Biotin-NHS修饰 | 第71-72页 |
| ·E306的Biotin-NHS修饰产物分析 | 第72-73页 |
| ·Biotin-NHS修饰的E306活性检测 | 第73页 |
| 3. 结果 | 第73-79页 |
| ·E306的Biotin-NHS修饰产物电泳分析 | 第74-75页 |
| ·E306的Biotin-NHS修饰产物高效液相色谱分析 | 第75-77页 |
| ·E306口服活性 | 第77-78页 |
| ·Biotin-NHS修饰的E306口服活性 | 第78-79页 |
| 4. 讨论 | 第79-81页 |
| 附录 | 第81-82页 |
| 参考文献 | 第82-89页 |
| 致谢 | 第89页 |
