| 摘要 | 第1-11页 |
| ABSTRACT | 第11-14页 |
| 缩略语 | 第14-16页 |
| 第一章 文献综述 | 第16-44页 |
| 1 前言 | 第16-17页 |
| 2 促炎细胞因子的主要分类及细胞来源 | 第17-19页 |
| ·肿瘤坏死因子 | 第17-18页 |
| ·白细胞介素1 | 第18页 |
| ·白细胞介素6 | 第18-19页 |
| 3 促炎细胞因子对动物骨骼肌生长的影响 | 第19-20页 |
| 4 促炎细胞因子影响骨骼肌蛋白质分解途径的机制 | 第20-27页 |
| ·骨骼肌蛋白质的分解代谢 | 第20-23页 |
| ·MuRF-1和MAFbx基因在骨骼肌蛋白的分解代谢中的作用 | 第23-24页 |
| ·NF-κB对MuRF1的调控作用 | 第24-25页 |
| ·促炎细胞因子与NF-κB的活化 | 第25-27页 |
| 5 n-3 PUFA对炎症和免疫功能影响的分子机制 | 第27-39页 |
| ·n-3PUFA对细胞内脂肪酸代谢产物的影响 | 第27-28页 |
| ·n-3PUFA对细胞膜磷脂脂肪酸构成的影响 | 第28页 |
| ·n-3PUFA对酶作用的影响 | 第28-29页 |
| ·n-3PUFA对细胞膜流动性的作用 | 第29页 |
| ·n-3PUFA对促炎细胞因子产生的影响 | 第29-32页 |
| ·n-3PUFA对促炎细胞因子基因表达的影响 | 第32-39页 |
| ·过氧化物酶体增殖物激活受体 | 第33-36页 |
| ·核因子κB | 第36-37页 |
| ·PPARs/NF-κB信号通路对促炎细胞因子的调控作用 | 第37-39页 |
| 6 亚麻籽日粮对猪组织中n-3PUFA富集量的影响 | 第39-40页 |
| 7 n-3PUFA通过抑制NF-κB的活化影响骨骼肌生长的可能机制 | 第40-43页 |
| 研究目的与意义 | 第43-44页 |
| 第二章 猪生长肥育期添加亚麻籽对组织中n-3PUFA富集量和肌肉重的影响 | 第44-57页 |
| 1 前言 | 第44页 |
| 2 材料与方法 | 第44-47页 |
| ·试验设计与试验日粮 | 第44-46页 |
| ·试验动物 | 第46页 |
| ·饲养管理 | 第46页 |
| ·测定指标及方法 | 第46-47页 |
| ·胴体和肉质 | 第46页 |
| ·脂肪酸组成的分析 | 第46-47页 |
| ·数据处理 | 第47页 |
| 3 试验结果 | 第47-54页 |
| ·日粮脂肪酸组成 | 第47-48页 |
| ·添加亚麻籽日粮对生长肥育猪胴体性状、肉质品质的影响 | 第48-49页 |
| ·添加亚麻籽日粮对生长肥育猪肌肉块重量的影响 | 第49-50页 |
| ·添加亚麻籽日粮对生长肥育猪脂肪酸组成的影响 | 第50-53页 |
| ·猪背最长肌脂肪酸组成 | 第50页 |
| ·猪皮下脂肪脂肪酸组成 | 第50-53页 |
| ·背最长肌中脂肪酸组成与背最长肌重的关系 | 第53-54页 |
| 4 讨论 | 第54-57页 |
| ·亚麻籽来源的n-3 PUFA对生长肥育猪脂肪酸组成的影响 | 第54-55页 |
| ·添加亚麻籽日粮对生长肥育猪肉质品质的影响 | 第55-56页 |
| ·亚麻籽来源的n-3 PUFA对生长肥育猪肌肉重的影响 | 第56-57页 |
| 第三章 猪生长肥育期添加亚麻籽对PPARγ、TNFα基因表达和肌肉块重量的影响 | 第57-69页 |
| 1 前言 | 第57页 |
| 2 材料与方法 | 第57-61页 |
| ·试验设计与试验日粮 | 第57-58页 |
| ·试验动物 | 第58页 |
| ·饲养管理 | 第58页 |
| ·组织样及血样采集 | 第58页 |
| ·仪器设备和试剂 | 第58-59页 |
| ·主要仪器设备 | 第58页 |
| ·试剂来源 | 第58-59页 |
| ·试剂配制 | 第59页 |
| ·测定指标及方法 | 第59-61页 |
| ·胴体性状 | 第59页 |
| ·促炎细胞因子基因表达 | 第59-61页 |
| ·数据处理 | 第61页 |
| 3 结果和分析 | 第61-67页 |
| ·添加亚麻籽日粮对生长肥育猪肌肉块重量的影响 | 第61页 |
| ·基因表达 | 第61-64页 |
| ·日粮中添加亚麻籽对PPARγ表达量的影响 | 第61-63页 |
| ·日粮中添加亚麻籽对TNFα表达量的影响 | 第63-64页 |
| ·日粮中添加亚麻籽对血清中TNFα浓度的影响 | 第64-65页 |
| ·PPARγ和促炎细胞因子表达量的相关分析 | 第65页 |
| ·PPARγ表达量与血清中促炎细胞因子浓度的相关分析 | 第65页 |
| ·基因表达和背最长肌肉重的关系 | 第65-67页 |
| 4 讨论 | 第67-69页 |
| 第四章 n-3PUFA对C2C12骨骼肌细胞NF-κB活性和MuRF1基因的影响 | 第69-88页 |
| 1 前言 | 第69-70页 |
| 2 材料与方法 | 第70-82页 |
| ·材料 | 第70页 |
| ·试剂 | 第70页 |
| ·主要仪器、设备及器皿 | 第70页 |
| ·溶液 | 第70-73页 |
| ·细胞培养用液的配制 | 第70-71页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳缓冲液 | 第71页 |
| ·抗生素贮存液 | 第71-72页 |
| ·十二烷基硫酸钠-丙烯酰胺电泳(SDS-PAGE)缓冲液 | 第72页 |
| ·Western blott缓冲液 | 第72-73页 |
| ·其它缓冲液 | 第73页 |
| ·试验用品的清洗与消毒 | 第73-74页 |
| ·玻璃器皿的清洗和消毒 | 第73页 |
| ·金属器械的清洗和消毒 | 第73页 |
| ·橡胶和塑料用品的清洗和消毒 | 第73-74页 |
| ·细胞的冻存和复苏 | 第74-75页 |
| ·细胞的冻存 | 第74页 |
| ·细胞的复苏 | 第74-75页 |
| ·细胞培养(小鼠C2C12成肌细胞系) | 第75页 |
| ·Western blot测定IκBα蛋白表达量 | 第75-77页 |
| ·单层贴壁细胞总蛋白的提取 | 第75-76页 |
| ·蛋白质的SDS-PAGE检测 | 第76页 |
| ·电转 | 第76页 |
| ·染色 | 第76-77页 |
| ·封闭 | 第77页 |
| ·第一抗体和靶蛋白结合 | 第77页 |
| ·酶标二抗与硝酸纤维素滤膜的温育 | 第77页 |
| ·加入底物显色 | 第77页 |
| ·基因表达 | 第77-80页 |
| ·总RNA的提取 | 第77-78页 |
| ·总RNA质量检测 | 第78页 |
| ·总RNA的DNase-Ⅰ处理 | 第78页 |
| ·总RNA反转录,合成cDNA第一链 | 第78-79页 |
| ·PPARγ、TNF-α,MuRF1及β-actin基因的定量PCR | 第79-80页 |
| ·凝胶阻滞电泳 | 第80-82页 |
| ·核蛋白的提取 | 第80页 |
| ·探针的标记与纯化 | 第80-81页 |
| ·探针的纯化 | 第81页 |
| ·测定探针的放射活性 | 第81页 |
| ·凝胶迁移阻滞法测定NF-κB | 第81-82页 |
| ·数据处理 | 第82页 |
| 3 结果和分析 | 第82-85页 |
| ·不同脂肪酸对PPARγ、TNFα和MuRF1基因表达量的影响 | 第82-83页 |
| ·不同浓度脂肪酸对IκBα蛋白质表达量的影响 | 第83-84页 |
| ·不同脂肪酸对NF-κB活性的影响 | 第84-85页 |
| 4 讨论 | 第85-88页 |
| 第五章 结语 | 第88-93页 |
| 1 结论 | 第88-91页 |
| ·持续添加亚麻籽日粮对生长肥育猪组织中n-3 PUFA富集量和肌肉块重量的影响 | 第88-89页 |
| ·持续添加亚麻籽日粮对生长肥育猪组织中PPARγ、TNFα基因表达和肌肉块重量的影响 | 第89-90页 |
| ·n-3PUFA对C2C12骨骼肌细胞IκBα蛋白和MuRF1基因的影响 | 第90-91页 |
| 2 创新点 | 第91-93页 |
| 参考文献 | 第93-113页 |
| 附录 在读期间发表的主要研究论文 | 第113-114页 |
| 致谢 | 第114页 |
