| 1 引言 | 第1-12页 |
| 2 材料与方法 | 第12-18页 |
| ·植物与真菌 | 第12页 |
| ·细胞间隙液的制备 | 第12页 |
| ·洛夫林10小麦悬浮系的建立 | 第12页 |
| ·小麦叶锈菌芽管研磨液和水培液的制备 | 第12-13页 |
| ·激发子活性跟踪 | 第13-14页 |
| ·注射小麦叶片测定酶活 | 第13页 |
| ·处理小麦悬浮细胞进行形态学观察和DNA分析 | 第13-14页 |
| ·IWF_(165)中激发子的分离纯化 | 第14-16页 |
| ·IWF的分级沉淀 | 第14页 |
| ·凝胶过滤柱层析 | 第14页 |
| ·等电聚焦电泳 | 第14-15页 |
| ·离子交换柱层析 | 第15页 |
| ·SDS-PAGE电泳 | 第15-16页 |
| ·肽指纹图谱分析 | 第16-18页 |
| 3 结果与分析 | 第18-35页 |
| ·叶锈菌萌发滤液及萌发芽管的研磨液中可能不具备激发子活性 | 第18页 |
| ·叶锈菌萌发状态的观察 | 第18页 |
| ·萌发的叶锈菌研磨液和水培液中激发子活性的检验 | 第18页 |
| ·IWF_(165)中激发子活性的验证 | 第18-22页 |
| ·IWF_(165)对小麦叶片PAL和POD的诱导 | 第19页 |
| ·IWF_(165)对小麦悬浮细胞程序性死亡的诱导 | 第19-22页 |
| ·IWF_(165)中激发子的纯化 | 第22-32页 |
| ·IWF_(165)分级沉淀后的活性分布 | 第22-27页 |
| ·IWF_(165)经凝胶过滤柱层析后活性成分的分离 | 第27-28页 |
| ·等电聚焦电泳分析凝胶柱层析峰1 | 第28页 |
| ·F1的离子交换柱层析分离分析 | 第28-30页 |
| ·SDS-PAGE电泳分析 | 第30-32页 |
| ·LF1中蛋白质电泳纯的肽指纹图谱分析 | 第32-35页 |
| 4 讨论 | 第35-41页 |
| ·叶锈菌小种165夏孢子萌发芽管的研磨液及其水培液中可能不存在激发子活性物质 | 第35页 |
| ·激发子对小麦悬浮细胞PCD的诱导 | 第35-36页 |
| ·IWF_(165)中激发子的初步定性分析 | 第36-37页 |
| ·IWF_(165)激发子纯化过程中不同组分表现诱导活性各异的原因 | 第37-39页 |
| ·IWF_(165)经凝胶过滤柱层析后各峰洗脱液诱导活性分析 | 第37-38页 |
| ·IWF_(165)经离子交换柱层析后各峰液诱导活性分析 | 第38-39页 |
| ·激发子的电泳纯结果 | 第39页 |
| ·IWF_(165)中激发子来源的分析 | 第39-41页 |
| 5 结论 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-49页 |
| 在读期间发表的学术论文 | 第49-50页 |
| 作者简历 | 第50-51页 |
| 致谢 | 第51页 |
