| 中文摘要 | 第1-9页 |
| 英文摘要 | 第9-12页 |
| 1 前言 | 第12-27页 |
| ·海洋动物活性物质的研究进展 | 第12-20页 |
| ·海洋动物多肽及短肽 | 第12-15页 |
| ·海洋动物的多糖及糖复合物 | 第15-16页 |
| ·海洋动物的不饱和脂肪酸 | 第16-17页 |
| ·A 海洋动物的甾体化合物 | 第17-19页 |
| ·海洋动物的萜类化合物 | 第19页 |
| ·海洋动物的大环内酯化合物 | 第19-20页 |
| ·海洋动物活性物质的生理活性 | 第20-24页 |
| ·抗肿瘤活性 | 第20-22页 |
| ·抗病毒活性活性研究 | 第22-23页 |
| ·抗氧化活性研究 | 第23-24页 |
| ·问题的提出及本项目研究的意义 | 第24-27页 |
| 2 河蚬活性蛋白的分离纯化和抑制肝癌细胞株BEL7404的活性分析 | 第27-54页 |
| ·材料 | 第27页 |
| ·供试材料 | 第27页 |
| ·供试细胞株 | 第27页 |
| ·层析介质 | 第27页 |
| ·主要实验仪器 | 第27页 |
| ·方法 | 第27-34页 |
| ·河蚬活性蛋白的分离纯化 | 第28-29页 |
| ·样品处理 | 第28页 |
| ·硫酸铵盐析 | 第28页 |
| ·亲和层析 | 第28页 |
| ·SP Sephorose Fast Flow层析 | 第28-29页 |
| ·HPLC分离制备 | 第29页 |
| ·纯度鉴定 | 第29页 |
| ·SDS／PAGE电泳测定分子量 | 第29页 |
| ·紫外光谱分析 | 第29页 |
| ·糖含量测定 | 第29-30页 |
| ·氨基酸组成分析 | 第30页 |
| ·河蚬活性蛋白对肝癌BEL7404细胞的活性分析 | 第30-34页 |
| ·细胞株和细胞培养 | 第30页 |
| ·对细胞形态的影响 | 第30页 |
| ·对BEL7404细胞增殖的作用 | 第30-31页 |
| ·对BEL7404细胞生长抑制的量效关系测定 | 第30-31页 |
| ·对BEL7404细胞生长抑制的时效关系测定 | 第31页 |
| ·对BEL7404细胞增殖周期的影响 | 第31-32页 |
| ·对BEL7404细胞增殖周期的影响的量效测定 | 第31-32页 |
| ·对BEL7404细胞增殖周期的影响的时效测定 | 第32页 |
| ·对诱导BEL7404细胞凋亡发生的影响 | 第32-34页 |
| ·对BEL7404细胞凋亡发生的影响的量效测定 | 第32页 |
| ·对BEL7404细胞凋亡发生的影响的时效测定 | 第32-34页 |
| ·结果与分析 | 第34-48页 |
| ·河蚬活性蛋白的分离纯化和鉴定 | 第34-38页 |
| ·CFp-a紫外吸收光谱 | 第38-39页 |
| ·CFp-a氨基酸组成分析 | 第39页 |
| ·CFp-a糖含量测定 | 第39-40页 |
| ·CFp-a作用下细胞形态学的改变 | 第40-41页 |
| ·CFp-a对BEL7404细胞的生长抑制率 | 第41-42页 |
| ·g CFp-a对BEL7404细胞周期分布的影响和量效变化 | 第42-43页 |
| ·CFp-a对BEL7404细胞周期分布的影响和时效变化 | 第43-48页 |
| ·讨论 | 第48-54页 |
| ·河蚬活性蛋白CFp-a的分离纯化及其特性 | 第48页 |
| ·细胞凋亡的检测方法的比较 | 第48-50页 |
| ·CFp-a与其它蛋白或糖蛋白的抗肿瘤活性的比较 | 第50-54页 |
| 3 河蚬多糖的分离提取纯化、特征分析及其活性分析 | 第54-80页 |
| ·材料 | 第54-55页 |
| ·供试材料 | 第54页 |
| ·供试植株 | 第54页 |
| ·供试毒源 | 第54页 |
| ·层析介质 | 第54页 |
| ·主要实验仪器 | 第54页 |
| ·生化试剂 | 第54-55页 |
| ·方法 | 第55-60页 |
| ·河蚬多糖提取方法一 | 第55-56页 |
| ·河蚬丙酮萃取粉制备 | 第55页 |
| ·浸提单因素实验 | 第55页 |
| ·醇沉条件的选择 | 第55页 |
| ·酶水解条件的影响 | 第55-56页 |
| ·河蚬多糖提取方法二 | 第56页 |
| ·河蚬多糖的分离纯化 | 第56页 |
| ·离子交换层析 | 第56页 |
| ·凝胶层析 | 第56页 |
| ·河蚬多糖纯度鉴定 | 第56页 |
| ·河蚬多糖的特征分析 | 第56-57页 |
| ·紫外吸收光谱分析 | 第56页 |
| ·河蚬多糖的红外光谱分析 | 第56-57页 |
| ·硫酸基的测定 | 第57页 |
| ·河蚬多糖的异染性质 | 第57页 |
| ·河蚬多糖的抗TMV活性分析 | 第57-58页 |
| ·对TMV体外抑制作用 | 第57页 |
| ·对TMV侵染位点的作用 | 第57页 |
| ·对TMV物理结构的影响 | 第57-58页 |
| ·对TMV系统侵染的作用 | 第58页 |
| ·河蚬多糖的体外抗氧化活性研究 | 第58-60页 |
| ·结果 | 第60-77页 |
| ·河蚬多糖的提取 | 第60-65页 |
| ·河蚬多糖提取方法一 | 第60-61页 |
| ·河蚬多糖提取方法二 | 第61页 |
| ·酶解条件的选择 | 第61-64页 |
| ·醇沉条件的选择 | 第64-65页 |
| ·河蚬多糖的分离纯化 | 第65-67页 |
| ·河蚬多糖的特征分析 | 第67-73页 |
| ·多糖的物理性质 | 第67页 |
| ·紫外吸收光谱 | 第67-69页 |
| ·红外吸收光谱 | 第69-72页 |
| ·河蚬多糖的异染作用 | 第72页 |
| ·硫酸基的测定 | 第72-73页 |
| ·河蚬多糖的抗TMV的活性分析 | 第73-75页 |
| ·体外对TMV的抑制活性 | 第73页 |
| ·对叶面TMV侵染位点的影响 | 第73-74页 |
| ·对TMV系统侵染的作用 | 第74-75页 |
| ·河蚬多糖对TMV物理结构的影响 | 第75页 |
| ·河蚬多糖的抗氧化活性分析 | 第75-77页 |
| ·讨论 | 第77-80页 |
| 4 结语 | 第80-82页 |
| ·主要研究结果 | 第80-81页 |
| ·特色 | 第81页 |
| ·有待于进一步深入研究的问题 | 第81-82页 |
| 参考文献 | 第82-94页 |
| 致谢 | 第94-95页 |
| 附录 | 第95-96页 |
