第1章 绪论 | 第1-14页 |
1.1 课题研究背景及意义 | 第9-11页 |
1.1.1 研究背景 | 第9-10页 |
1.1.2 目的意义 | 第10-11页 |
1.2 国内外研究进展 | 第11-12页 |
1.2.1 国外研究进展 | 第11页 |
1.2.2 国内研究进展 | 第11-12页 |
1.3 天然产物中有效成分的分离研究 | 第12-13页 |
1.3.1 早期的方法 | 第12页 |
1.3.2 现今的方法 | 第12-13页 |
1.4 本文的主要工作 | 第13-14页 |
第2章 生物活性微生物代谢物研究进展 | 第14-33页 |
2.1 微生物生物活性物质的研究进展 | 第14-21页 |
2.1.1 微生物新生物活性物质的研究概况 | 第14页 |
2.1.2 生物活性物质的筛选 | 第14-18页 |
2.1.3 稀有放线菌作为新生物活性物质来源越来越受到重视 | 第18-19页 |
2.1.4 抗肿瘤抗生素的研究进展 | 第19-21页 |
2.2 不同生态环境中微生物样本的分离及选择 | 第21-26页 |
2.2.1 生态系统多样化 | 第22-24页 |
2.2.2 菌种分离策略 | 第24-26页 |
2.3 海洋微生物生物活性代谢物研究进展及技术问题 | 第26-32页 |
2.3.1 海洋微生物代谢物的研究进展迅速 | 第26-27页 |
2.3.2 海洋微生物代谢物的化学结构多样性和复杂性 | 第27页 |
2.3.3 海洋微生物代谢物的生物活性研究 | 第27-30页 |
2.3.4 海洋微生物代谢物研究面临的问题 | 第30-31页 |
2.3.5 展望 | 第31-32页 |
2.4 本章小结 | 第32-33页 |
第3章 活性代谢物的体外筛选 | 第33-39页 |
3.1 材料与方法 | 第33-35页 |
3.1.1 仪器与试剂 | 第33页 |
3.1.2 供试土壤放线菌 | 第33-34页 |
3.1.3 筛选样品的制备 | 第34页 |
3.1.4 细胞培养及MTT法 | 第34-35页 |
3.2 结果与讨论 | 第35-37页 |
3.3 本章小结 | 第37-39页 |
第4章 有效成分的提取、分离纯化 | 第39-48页 |
4.1 发酵 | 第39-40页 |
4.1.1 材料与方法 | 第39页 |
4.1.2 结果与讨论 | 第39-40页 |
4.2 2278~#菌种的提取 | 第40-42页 |
4.2.1 材料与方法 | 第40-41页 |
4.2.2 结果与讨论 | 第41-42页 |
4.3 有效成分的硅胶柱分离制备 | 第42-44页 |
4.3.1 材料与方法 | 第42页 |
4.3.2 结果与讨论 | 第42-44页 |
4.4 活性成分的HPLC分离纯化 | 第44-47页 |
4.4.1 材料与方法 | 第44页 |
4.4.2 结果与讨论 | 第44-47页 |
4.5 本章小结 | 第47-48页 |
第5章 有效成分的结构鉴定 | 第48-60页 |
5.1 化合物的结构研究 | 第48-49页 |
5.1.1 化合物的纯度测定 | 第48-49页 |
5.1.2 结构研究的主要程序 | 第49页 |
5.2 核磁共振波谱法 | 第49-53页 |
5.2.1 概述 | 第49-51页 |
5.2.2 氢谱在利用体液进行药物代谢研究时的应用 | 第51页 |
5.2.3 碳谱在药物代谢研究中的应用 | 第51-53页 |
5.3 质谱法 | 第53-56页 |
5.3.1 概述 | 第53-54页 |
5.3.2 质谱分析法的特点和用途 | 第54-55页 |
5.3.3 质谱新方法、新技术及其在药物研究中的作用 | 第55-56页 |
5.4 化合物HYH-II-49I的理化性质 | 第56-57页 |
5.5 化合物HYH-II-49I的结构鉴定 | 第57-59页 |
5.5.1 仪器与试剂 | 第57页 |
5.5.2 结构鉴定 | 第57-59页 |
5.6 本章小结 | 第59-60页 |
结论 | 第60-61页 |
参考文献 | 第61-66页 |
攻读硕士学位期间发表的论文 | 第66-67页 |
致谢 | 第67-68页 |
附录 | 第68-75页 |