道地药材短葶山麦冬、雷公藤基于RAPD种源鉴别研究
| 摘要 | 第1-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 1 前言 | 第12-32页 |
| ·种源鉴定 | 第12-21页 |
| ·形态标记 | 第12页 |
| ·细胞学标记 | 第12-13页 |
| ·生化标记 | 第13-14页 |
| ·DNA 分子遗传标记技术 | 第14-20页 |
| ·其它鉴别方法 | 第20-21页 |
| ·短葶山麦冬研究进展 | 第21-26页 |
| ·本草考证 | 第21-22页 |
| ·种源分布与组织结构 | 第22页 |
| ·化学成分 | 第22-24页 |
| ·药理作用 | 第24-25页 |
| ·短葶山麦冬的种源鉴别研究进展 | 第25-26页 |
| ·雷公藤研究进展 | 第26-31页 |
| ·本草考证 | 第26-27页 |
| ·生物学特征 | 第27页 |
| ·资源分布 | 第27-28页 |
| ·化学成分 | 第28-29页 |
| ·药理作用及毒副作用 | 第29-30页 |
| ·其它作用 | 第30-31页 |
| ·雷公藤的品种鉴别研究进展 | 第31页 |
| ·选择RAPD 技术进行研究的原因 | 第31-32页 |
| 2 材料与方法 | 第32-40页 |
| ·材料 | 第32-36页 |
| ·供试样品 | 第32-35页 |
| ·RAPD 引物 | 第35页 |
| ·主要试剂的配制 | 第35-36页 |
| ·实验试剂及主要仪器设备 | 第36页 |
| ·方法 | 第36-38页 |
| ·传统DNA 提取与纯化步骤（CTAB 法） | 第36-37页 |
| ·改进DNA 提取与纯化步骤（CTAB 法） | 第37页 |
| ·快速DNA 提取与纯化步骤 | 第37页 |
| ·模板DNA 的质量检测与浓度确定 | 第37-38页 |
| ·RAPD 技术体系的建立 | 第38-39页 |
| ·RAPD 条件的优化 | 第38页 |
| ·山麦冬PCR 反应成分的优化 | 第38-39页 |
| ·雷公藤PCR 反应成分的优化 | 第39页 |
| ·PCR 产物的检测 | 第39-40页 |
| ·RAPD 产物数据分析 | 第40页 |
| 3 山麦冬结果与分析 | 第40-52页 |
| ·提取DNA 样品的浓度、纯度分析 | 第40-41页 |
| ·RAPD 技术体系的建立 | 第41-45页 |
| ·扩增程序的优化 | 第41-42页 |
| ·反应体系的优化 | 第42-44页 |
| ·多态性引物筛选 | 第44-45页 |
| ·RAPD-PCR 扩增结果 | 第45-52页 |
| ·山麦冬植物RAPD 标记多态性分析 | 第45-47页 |
| ·山麦冬属遗传多样性分析 | 第47-48页 |
| ·山麦冬属基于聚类分析和遗传距离的种源鉴定 | 第48-49页 |
| ·山麦冬的数字指纹码 | 第49-52页 |
| 4 雷公藤结果与分析 | 第52-74页 |
| ·提取DNA 样品的浓度、纯度分析 | 第52-53页 |
| ·传统CTAB 法提取DNA | 第52页 |
| ·改进CTAB 法提取DNA | 第52页 |
| ·植物基因组试剂盒提取DNA | 第52-53页 |
| ·RAPD 技术体系的建立 | 第53-55页 |
| ·扩增程序的优化 | 第53-54页 |
| ·反应体系的优化 | 第54页 |
| ·多态性引物筛选 | 第54-55页 |
| ·RAPD-PCR 扩增结果 | 第55-74页 |
| ·雷公藤RAPD 标记多态性分析 | 第55-59页 |
| ·雷公藤各种源遗传多样性分析 | 第59-61页 |
| ·雷公藤基于聚类分析和遗传距离的种源鉴定 | 第61-65页 |
| ·雷公藤的数字指纹码 | 第65-74页 |
| 5 结论和讨论 | 第74-80页 |
| ·结论 | 第74-76页 |
| ·短葶山麦冬 | 第74页 |
| ·雷公藤 | 第74-76页 |
| ·讨论 | 第76-80页 |
| ·种源鉴定的采样策略 | 第76-77页 |
| ·中药材 DNA 提取方法 | 第77页 |
| ·PCR 反应体系优化方法的选取 | 第77-78页 |
| ·PCR 实验过程中应注意的问题 | 第78页 |
| ·对于扩增结果的统计与分析 | 第78-79页 |
| ·RAPD 用于道地性中药材鉴定的数据准确性探讨 | 第79-80页 |
| 参考文献 | 第80-86页 |
| 致谢 | 第86页 |
