| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 符号说明 | 第10-11页 |
| 第1章 前言 | 第11-24页 |
| 1.1 再生与干细胞 | 第11-14页 |
| 1.1.1 自然界中再生现象 | 第11页 |
| 1.1.2 成熟的再生模型 | 第11-13页 |
| 1.1.3 干细胞在再生过程中作用 | 第13-14页 |
| 1.2 涡虫再生 | 第14-21页 |
| 1.2.1 涡虫再生 | 第14页 |
| 1.2.2 涡虫再生研究进展 | 第14-21页 |
| 1.3 转录因子与再生 | 第21-22页 |
| 1.4 研究目的 | 第22-24页 |
| 第2章 实验材料和方法 | 第24-45页 |
| 2.1 实验材料 | 第24-31页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第24页 |
| 2.1.2 细菌菌株 | 第24页 |
| 2.1.3 质粒、引物和试剂 | 第24-25页 |
| 2.1.4 化学试剂 | 第25页 |
| 2.1.5 培养基 | 第25-26页 |
| 2.1.6 缓冲试剂 | 第26-31页 |
| 2.1.7 实验仪器 | 第31页 |
| 2.2 实验方法 | 第31-45页 |
| 2.2.1 涡虫养殖 | 第31页 |
| 2.2.2 涡虫切割 | 第31-32页 |
| 2.2.3 涡虫X-ray/Gamma-ray照射 | 第32页 |
| 2.2.4 涡虫RNA抽提,反转以及q RT-PCR | 第32-34页 |
| 2.2.5 涡虫ds RNA合成 | 第34页 |
| 2.2.6 涡虫RNAi | 第34-35页 |
| 2.2.7 基因克隆 | 第35页 |
| 2.2.8 原位杂交探针合成 | 第35-36页 |
| 2.2.9 涡虫整胚原位杂交 | 第36-39页 |
| 2.2.10 涡虫整胚免疫荧光 | 第39-40页 |
| 2.2.11 涡虫成体干细胞分选 | 第40页 |
| 2.2.12 涡虫细胞荧光原位杂交 | 第40-41页 |
| 2.2.13 涡虫整胚TUNEL检测 | 第41-42页 |
| 2.2.14 涡虫石蜡切片免疫荧光 | 第42-43页 |
| 2.2.15 涡虫震动切片 | 第43页 |
| 2.2.16 芯片设计与结果分析 | 第43-44页 |
| 2.2.17 系统进化树分析 | 第44-45页 |
| 第3章 实验结果 | 第45-87页 |
| 3.1 全基因组水平筛选涡虫再生与稳态维持必需的转录因子 | 第45-58页 |
| 3.1.1 涡虫全基因组转录因子筛选概述 | 第45-46页 |
| 3.1.2 筛选得到5个转录因子对涡虫头尾极性的建立或维持相关 | 第46-47页 |
| 3.1.3 筛选得到涡虫色素代谢、神经和运动相关的转录因子。 | 第47-51页 |
| 3.1.4 大部分的表型基因既影响涡虫的稳态维持又影响再生 | 第51-52页 |
| 3.1.5 大部分影响涡虫再生与稳态维持的转录因子在涡虫再生3天时表达量达到最大 | 第52-54页 |
| 3.1.6 zbtb6 能对涡虫成体干细胞进行非自主调控 | 第54-58页 |
| 3.2 smed-pogz调控涡虫再生起始与稳态维持 | 第58-87页 |
| 3.2.1 pogz是涡虫再生必需的,并且主要表达在涡虫成体干细胞 | 第58-65页 |
| 3.2.2 pogz是涡虫干细胞响应再生必需的 | 第65-69页 |
| 3.2.3 dis3l2 是pogz RNAi表型必需的 | 第69-74页 |
| 3.2.4 pogz对涡虫组织缺失后干细胞的识别是必需的 | 第74-78页 |
| 3.2.5 pogz是涡虫成体干细胞分化必需的 | 第78-82页 |
| 3.2.6 zfp-1 和inx-11 是pogz促进干细胞分化所必需 | 第82-84页 |
| 3.2.7 模式图 | 第84-87页 |
| 第4章 实验结论 | 第87-90页 |
| 4.1 我们总共筛选了598个转录因子,发现60个有表型 | 第87页 |
| 4.2 zbtb6 能通过间接方式抑制涡虫成体干细胞的增殖 | 第87-88页 |
| 4.3 在再生过程中,pogz通过促进dis3l2 的表达起始再生特异的干细胞局部增殖 | 第88-89页 |
| 4.4 在正常稳态维持过程中,pogz主要通调控zfp-1 和inx-11 促进成体干细胞的分化 | 第89-90页 |
| 参考文献 | 第90-96页 |
| 致谢 | 第96-97页 |
| 学术论文和参加学术会议情况 | 第97-99页 |
