| 致谢 | 第1-9页 |
| 摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-14页 |
| 缩略语表 | 第14-17页 |
| 目录 | 第17-22页 |
| 1 绪论 | 第22-37页 |
| ·乙烯生物合成与调控 | 第22-24页 |
| ·乙烯及其功能 | 第22页 |
| ·乙烯生物合成途径 | 第22-23页 |
| ·乙烯生物合成相关酶的编码基因及其功能差异 | 第23页 |
| ·乙烯生物合成与果实成熟衰老的调控 | 第23-24页 |
| ·乙烯信号转导 | 第24-28页 |
| ·乙烯信号转导线性模型建立 | 第24-25页 |
| ·乙烯信号转导元件 | 第25-27页 |
| ·ETR | 第25页 |
| ·CTR1 | 第25-26页 |
| ·EIN2 | 第26页 |
| ·EIN3/EILs和ERFs | 第26-27页 |
| ·其他 | 第27-28页 |
| ·RTE1 | 第27页 |
| ·CTR1起始的激酶级联反应 | 第27页 |
| ·EBF1和EBF2 | 第27-28页 |
| ·乙烯信号转导与果实成熟衰老 | 第28-34页 |
| ·果实乙烯信号转导元件的克隆 | 第28-29页 |
| ·ETR与果实后熟 | 第29-31页 |
| ·番茄ETR | 第29-30页 |
| ·其它呼吸跃变型果实的ETR | 第30-31页 |
| ·非呼吸跃变型果实的ETR | 第31页 |
| ·ETR转录本丰度与蛋白质含量的关系 | 第31页 |
| ·CTR1与果实后熟 | 第31-32页 |
| ·EIN3/EILs与果实后熟 | 第32页 |
| ·ERFs与果实后熟 | 第32-33页 |
| ·新型乙烯突变体 | 第33-34页 |
| ·乙烯信号转导与非生物胁迫 | 第34-35页 |
| ·乙烯信号转导与植株逆境应答 | 第34页 |
| ·乙烯信号转导与果实采后逆境 | 第34-35页 |
| ·果实乙烯信号转导研究现状与展望 | 第35-36页 |
| ·研究目标和内容 | 第36-37页 |
| 2 试验材料与方法 | 第37-51页 |
| ·基因克隆 | 第37-40页 |
| ·EST序列提取 | 第37页 |
| ·兼并引物获得基因片段 | 第37-38页 |
| ·总RNA提取 | 第38页 |
| ·利用RACE技术分离全长序列 | 第38-40页 |
| ·引物设计 | 第38页 |
| ·cDNA合成及全长基因PCR扩增 | 第38-40页 |
| ·分子克隆和测序 | 第40页 |
| ·序列分析 | 第40页 |
| ·果实材料采集、处理和测定 | 第40-42页 |
| ·发育阶段果实 | 第40页 |
| ·成熟猕猴桃果实(2007年) | 第40-41页 |
| ·成熟猕猴桃果实(2008年) | 第41页 |
| ·ACO敲除的猕猴桃果实 | 第41页 |
| ·组织特异性分析用试材收集 | 第41-42页 |
| ·乙烯释放速率测定 | 第42页 |
| ·硬度和SSC测定 | 第42页 |
| ·失水率测定 | 第42页 |
| ·基因表达 | 第42-44页 |
| ·总RNA提取和cDNA合成 | 第42-43页 |
| ·引物设计 | 第43页 |
| ·引物检测 | 第43-44页 |
| ·实时定量PCR | 第44页 |
| ·基因互作 | 第44-48页 |
| ·启动子序列分离 | 第44-45页 |
| ·启动子序列分析 | 第45-46页 |
| ·Transient Assay | 第46-47页 |
| ·启动子删截(deletion) | 第47-48页 |
| ·烟草栽培 | 第48页 |
| ·拟南芥转基因 | 第48-50页 |
| ·表达载体构建 | 第48-49页 |
| ·转基因 | 第49页 |
| ·转基因拟南芥乙烯释放测定 | 第49页 |
| ·转基因拟南芥验证和目标基因检测 | 第49-50页 |
| ·转基因拟南芥逆境处理 | 第50页 |
| ·数据处理及统计学分析 | 第50-51页 |
| 3 基于EST库的猕猴桃乙烯信号转导元件分离与序列分析 | 第51-59页 |
| ·结果与分析 | 第52-59页 |
| ·猕猴桃乙烯信号转导四个不同级别元件的分离 | 第52-53页 |
| ·猕猴桃乙烯信号转导元件命名和同源性分析 | 第53-59页 |
| 4 猕猴桃果实后熟软化相关AdETRs和AdCTRs基因鉴别与调控 | 第59-71页 |
| ·结果与分析 | 第59-71页 |
| ·AdETRs和AdCTRs组织特异性分析 | 第59-60页 |
| ·AdETRs和AdCTRs在果实生长发育进程中的表达 | 第60-61页 |
| ·猕猴桃果实后熟衰老及调控 | 第61-63页 |
| ·猕猴桃果实20℃下后熟软化进程中AdETRs的表达 | 第63-67页 |
| ·低温贮藏猕猴桃果实中AdETRs的表达 | 第67-69页 |
| ·猕猴桃果实后熟软化进程中AdCTRs的表达 | 第69-71页 |
| 5 猕猴桃果实后熟软化相关AdEILs和AdERFs的鉴别及调控 | 第71-79页 |
| ·结果与分析 | 第71-79页 |
| ·猕猴桃AdEILs和AdERFs组织特异性分析 | 第71-72页 |
| ·猕猴桃AdEILs和AdERFs在果实生长发育进程中的表达 | 第72-73页 |
| ·猕猴桃果实后熟软化进程(20℃)中AdEILs和AdERFs的表达 | 第73-75页 |
| ·AdERFs在ACO敲除的猕猴桃果实中的表达模式 | 第75-76页 |
| ·AdEILs和AdERFs的低温应答模式 | 第76-79页 |
| 6 AdEILs和AdERFs与目标基因互作及其相关功能的验证 | 第79-87页 |
| ·结果与分析 | 第79-87页 |
| ·启动子区序列分离与结构域分析 | 第79-81页 |
| ·AdEILs和AdERFs与果实后熟软化基因启动子区互作 | 第81页 |
| ·启动子删截研究启动子区不同结构域在基因互作中的效益 | 第81-82页 |
| ·过量表达AdEIL2和AdEIL3诱导拟南芥乙烯合成 | 第82-83页 |
| ·AdEIL2和AdEIL3诱导拟南芥乙烯合成基因和XTH基因的表达 | 第83-84页 |
| ·过量表达AdEIL3、AdERF1和AdERF13增强拟南芥低温抗性 | 第84-87页 |
| 7 猕猴桃AdETRs和AdERFs对果实采后逆境胁迫的应答 | 第87-92页 |
| ·结果及分析 | 第87-92页 |
| ·采后猕猴桃果实短期逆境处理 | 第87-88页 |
| ·不同逆境处理对猕猴桃AdETRs基因的调控 | 第88-90页 |
| ·逆境处理的猕猴桃果实中AdERFs的表达 | 第90-92页 |
| 8 讨论 | 第92-104页 |
| ·猕猴桃乙烯信号转导途径多基因家族分离 | 第92-94页 |
| ·组织特异性和发育阶段特异性分析 | 第94-95页 |
| ·组织特异性分析 | 第94页 |
| ·发育阶段特异性分析 | 第94-95页 |
| ·猕猴桃果实后熟软化相关的乙烯信号转导成员鉴别、调控与验证 | 第95-99页 |
| ·AdETRs和AdCTRs与猕猴桃果实后熟软化 | 第95-97页 |
| ·AdEILs与猕猴桃果实后熟软化 | 第97-98页 |
| ·AdERFs与猕猴桃果实后熟软化 | 第98-99页 |
| ·猕猴桃果实采后非生物逆境胁迫相关的乙烯信号转导成员鉴别、调控与验证 | 第99-104页 |
| ·AdETRs和AdCTRs的低温应答模式 | 第100页 |
| ·AdEILs和AdERFs的低温应答模式 | 第100-101页 |
| ·AdEILs和AdERFs与猕猴桃果实采后非生物逆境胁迫 | 第101-104页 |
| 9 小结与展望 | 第104-107页 |
| ·小结 | 第104-105页 |
| ·展望 | 第105-107页 |
| 参考文献 | 第107-122页 |
| 作者简历及在学期间所取得的科研成果 | 第122-125页 |
