| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-12页 |
| 1 绪论 | 第12-22页 |
| ·研究背景 | 第12-13页 |
| ·多糖研究进展 | 第13-14页 |
| ·国内研究情况 | 第13页 |
| ·国外研究情况 | 第13-14页 |
| ·多糖的提取与分离纯化 | 第14-17页 |
| ·多糖的提取方法 | 第14-15页 |
| ·多糖的分离纯化 | 第15-17页 |
| ·多糖的分析方法 | 第17-18页 |
| ·多糖含量的测定方法 | 第17页 |
| ·多糖纯度鉴定 | 第17-18页 |
| ·多糖分子量测定 | 第18页 |
| ·多糖生理活性研究 | 第18-20页 |
| ·抗氧化作用 | 第18-19页 |
| ·降血脂活性 | 第19-20页 |
| ·抗氧化与降血脂的关系 | 第20页 |
| ·本论文的研究目标和内容 | 第20-22页 |
| ·研究目标 | 第20页 |
| ·研究内容 | 第20-22页 |
| 2 波纹巴非蛤糖胺聚糖提取条件的优化 | 第22-31页 |
| ·引言 | 第22-23页 |
| ·材料与仪器 | 第23页 |
| ·实验材料 | 第23页 |
| ·主要仪器设备 | 第23页 |
| ·实验设计与方法 | 第23-25页 |
| ·糖胺聚糖分离提取流程 | 第23页 |
| ·糖胺聚糖含量的测定 | 第23页 |
| ·标准曲线的建立 | 第23-24页 |
| ·单因素试验 | 第24页 |
| ·响应曲面法试验设计 | 第24-25页 |
| ·结果与分析 | 第25-29页 |
| ·单因素试验及其分析 | 第25-27页 |
| ·响应面试验结果与分析 | 第27-29页 |
| ·讨论 | 第29-31页 |
| 3 波纹巴非蛤糖胺聚糖纯化及理化性质研究 | 第31-42页 |
| ·引言 | 第31页 |
| ·材料与仪器 | 第31-33页 |
| ·试验材料 | 第31-32页 |
| ·主要实验仪器与设备 | 第32-33页 |
| ·试验方法 | 第33-37页 |
| ·DEAE-52-纤维素离子交换柱层析条件 | 第33页 |
| ·波纹巴非蛤糖胺聚糖的基本组成测定方法 | 第33-36页 |
| ·波纹巴非蛤糖胺聚糖分子量测定方法 | 第36-37页 |
| ·波纹巴非蛤糖胺聚糖两个极分的红外光谱检测 | 第37页 |
| ·结果与分析 | 第37-40页 |
| ·波纹巴非蛤糖胺聚糖DEAE-52-纤维素离子交换柱层析分离结果 | 第38页 |
| ·波纹巴非蛤糖胺聚糖粗品,精制品及纯化品的组成分析 | 第38-39页 |
| ·波纹巴非蛤糖胺聚糖柱层析后各极分的纯度 | 第39页 |
| ·波纹巴非蛤糖胺聚糖柱层析后各组分红外光谱分析 | 第39-40页 |
| ·讨论 | 第40-42页 |
| 4 波纹巴非蛤糖胺聚糖抗氧化活性检测 | 第42-51页 |
| ·引言 | 第42页 |
| ·材料与仪器 | 第42-43页 |
| ·实验材料 | 第42-43页 |
| ·主要仪器设备 | 第43页 |
| ·试验方法 | 第43-45页 |
| ·体外抗氧化活性检测 | 第43-44页 |
| ·体内抗氧化活性检测 | 第44-45页 |
| ·结果与分析 | 第45-50页 |
| ·体外抗氧化活性测定结果 | 第45-47页 |
| ·体内抗氧化能力测定结果 | 第47-50页 |
| ·讨论 | 第50-51页 |
| 5 波纹巴非蛤糖胺聚糖降血脂活性的研究 | 第51-55页 |
| ·引言 | 第51页 |
| ·材料与仪器 | 第51-52页 |
| ·试验材料 | 第51页 |
| ·主要仪器与设备 | 第51-52页 |
| ·试验方法 | 第52页 |
| ·高血脂小鼠的造模及分组处理 | 第52页 |
| ·降血脂测定指标与统计方法 | 第52页 |
| ·结果与分析 | 第52-54页 |
| ·对高血脂小鼠TC水平的影响 | 第52-53页 |
| ·对高血脂小鼠TG水平的影响 | 第53页 |
| ·对高血脂小鼠HDL、LDL水平及动脉硬化指数的影响 | 第53-54页 |
| ·讨论 | 第54-55页 |
| 6 结论与展望 | 第55-57页 |
| ·结论 | 第55-56页 |
| ·本课题尚须解决的问题 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-64页 |
| 致谢 | 第64-65页 |
| 附录 | 第65页 |
