| 中文摘要 | 第11-16页 |
| ABSTRACT | 第16-24页 |
| 缩略词表 | 第25-28页 |
| 前言 | 第28-30页 |
| 第一部分 文献综述 | 第30-58页 |
| 第一章 枳壳化学成分研究进展 | 第30-50页 |
| 第二章 枳壳的药理作用研究进展 | 第50-54页 |
| 第三章 枳壳炮制研究进展 | 第54-58页 |
| 第二部分 实验研究 | 第58-167页 |
| 第一章 UHPLC-Q-TOF-MS/MS鉴别枳壳醇提物化学成分 | 第58-78页 |
| 1 实验材料 | 第58-59页 |
| 1.1 药品与试剂 | 第58-59页 |
| 1.2 实验仪器 | 第59页 |
| 2 实验方法与结果 | 第59-75页 |
| 2.1 枳壳片的制备 | 第59页 |
| 2.2 供试品的配制 | 第59-60页 |
| 2.3 标准品溶液的制备 | 第60页 |
| 2.4 LC-MS条件 | 第60-61页 |
| 2.4.1 色谱条件 | 第60页 |
| 2.4.2 质谱条件 | 第60-61页 |
| 2.5 实验结果 | 第61-75页 |
| 2.5.1 样品化学成分的鉴定 | 第61页 |
| 2.5.2 主要化合物裂解规律 | 第61-75页 |
| 3 小结讨论 | 第75-78页 |
| 3.1 小结 | 第75-76页 |
| 3.2 讨论 | 第76-78页 |
| 3.2.1 药材的选择 | 第76页 |
| 3.2.2 供试品制备 | 第76-77页 |
| 3.2.3 UPLC-Q-TOF-MS/MS分析条件的摸索 | 第77页 |
| 3.2.4 质谱分析模型的选择 | 第77-78页 |
| 第二章 凤眼片与枳壳片醇提物化学成分差异研究 | 第78-95页 |
| 1 枳壳炮制品醇提物HPLC指纹图谱研究 | 第78-82页 |
| 1.1 实验材料 | 第78-79页 |
| 1.1.1 药品与试剂 | 第78页 |
| 1.1.2 实验仪器 | 第78-79页 |
| 1.2 实验方法与结果 | 第79-82页 |
| 1.2.1 样品的制备 | 第79页 |
| 1.2.2 供试品的配制 | 第79页 |
| 1.2.3 色谱条件及系统环境适应性实验 | 第79-81页 |
| 1.2.4 方法学考察 | 第81-82页 |
| 1.2.5 枳壳炮制品的指纹图谱构建 | 第82页 |
| 1.2.6 不同炮制品之间相似度分析 | 第82页 |
| 2 枳壳不同炮制品醇提物差异成分分析 | 第82-93页 |
| 2.1 实验材料 | 第82-84页 |
| 2.1.1 药品与试剂 | 第82-84页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第84页 |
| 2.2 实验方法与结果 | 第84-93页 |
| 2.2.1 样品的制备 | 第84页 |
| 2.2.2 供试品的配制 | 第84页 |
| 2.2.3 标准品溶液的制备 | 第84-85页 |
| 2.2.4 LC-MS条件 | 第85-86页 |
| 2.2.5 方法学考察 | 第86-89页 |
| 2.2.6 醇提物总离子流图 | 第89页 |
| 2.2.7 醇提物化学成分差异性分析 | 第89-91页 |
| 2.2.8 醇提物组间差异成分分析 | 第91-93页 |
| 3 小结讨论 | 第93-95页 |
| 3.1 小结 | 第93-94页 |
| 3.1.1 醇提物化学成分差异性分析 | 第93-94页 |
| 3.1.2 醇提物差异成分分析 | 第94页 |
| 3.2 讨论 | 第94-95页 |
| 3.2.1 样品的制备 | 第94页 |
| 3.2.2 分析模型的建立 | 第94-95页 |
| 第三章 凤眼片与枳壳片醇提物改善胃肠功能作用比较 | 第95-120页 |
| 1 实验材料 | 第95-96页 |
| 1.1 实验动物 | 第95页 |
| 1.2 药品与试剂 | 第95-96页 |
| 1.3 实验仪器 | 第96页 |
| 2 实验方法及结果 | 第96-111页 |
| 2.1 动物分组及给药 | 第96-97页 |
| 2.1.1 动物分组 | 第96-97页 |
| 2.1.2 动物给药方法 | 第97页 |
| 2.2 药品的制备 | 第97页 |
| 2.2.1 枳壳饮片的制备 | 第97页 |
| 2.2.2 药液的制备 | 第97页 |
| 2.3 动物造模 | 第97-98页 |
| 2.3.1 造模方法 | 第97-98页 |
| 2.3.2 造模评价 | 第98页 |
| 2.4 大鼠体重、食量测定 | 第98-102页 |
| 2.4.1 体重的测定 | 第98页 |
| 2.4.2 食量的测定 | 第98-102页 |
| 2.5 胃残留率和小肠推进率测定 | 第102-103页 |
| 2.5.1 营养性半固体糊的制备 | 第102页 |
| 2.5.2 实验操作步骤 | 第102页 |
| 2.5.3 测定结果 | 第102-103页 |
| 2.6 GAS、MTL、VIP含量测定 | 第103-108页 |
| 2.6.1 血液采集 | 第103-104页 |
| 2.6.2 分析检测步骤 | 第104-105页 |
| 2.6.3 胃泌素(GAS) | 第105-106页 |
| 2.6.4 胃动素(MTL) | 第106-107页 |
| 2.6.5 血管活性肠肽(VIP) | 第107-108页 |
| 2.7 模型大鼠给药前后胃的病理比较 | 第108-111页 |
| 2.7.1 胃组织石腊切片的制作 | 第109-110页 |
| 2.7.2 电镜观察与图像分析 | 第110页 |
| 2.7.3 给药前后胃切片结果 | 第110-111页 |
| 3 小结与讨论 | 第111-120页 |
| 3.1 小结 | 第111-115页 |
| 3.1.1 体重、食量的影响 | 第111-113页 |
| 3.1.2 对小肠推进率、胃残留率的影响 | 第113页 |
| 3.1.3 对血清GAS的影响 | 第113-114页 |
| 3.1.4 对血浆MTL的影响 | 第114页 |
| 3.1.5 对血清VIP的影响 | 第114-115页 |
| 3.1.6 给药前后大鼠胃的病理变化 | 第115页 |
| 3.2 讨论 | 第115-120页 |
| 3.2.1 动物模型的选择 | 第115-116页 |
| 3.2.2 阳性药的选择 | 第116页 |
| 3.2.3 对小肠推进率及胃排空率的影响 | 第116-117页 |
| 3.2.4 对血清GAS的影响 | 第117-118页 |
| 3.2.5 对血浆MTL的影响 | 第118页 |
| 3.2.6 对血清VIP的影响 | 第118-120页 |
| 第四章 凤眼片与枳壳片醇提物及萃取部位对津液影响的比较 | 第120-143页 |
| 1 凤眼片与枳壳片醇提物对正常小鼠津液的影响 | 第120-125页 |
| 1.1 实验材料 | 第120-121页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第120页 |
| 1.1.2 药品与试剂 | 第120-121页 |
| 1.1.3 实验仪器 | 第121页 |
| 1.2 实验方法及结果 | 第121-125页 |
| 1.2.1 动物分组及给药 | 第121-122页 |
| 1.2.2 药品的制备 | 第122页 |
| 1.2.3 饮水量增加量的测定 | 第122页 |
| 1.2.4 全血黏度(WBV)的测定 | 第122-124页 |
| 1.2.5 颌下腺AQP5含量的测定 | 第124-125页 |
| 2 凤眼片与枳壳片醇提物对模型大鼠津液的影响 | 第125-130页 |
| 2.1 实验材料 | 第125-126页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第125页 |
| 2.1.2 药品与试剂 | 第125页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第125-126页 |
| 2.2 实验方法及结果 | 第126-130页 |
| 2.2.1 动物分组及给药 | 第126-127页 |
| 2.2.2 药品的制备 | 第127页 |
| 2.2.3 动物造模 | 第127页 |
| 2.2.4 唾液流率测定 | 第127页 |
| 2.2.5 颌下腺AQP5含量测定 | 第127-130页 |
| 3 凤眼片与枳壳片各萃取部位对正常小鼠津液的影响 | 第130-136页 |
| 3.1 实验材料 | 第130-132页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第130-131页 |
| 3.1.2 药品与试剂 | 第131页 |
| 3.1.3 实验仪器 | 第131-132页 |
| 3.2 实验方法及结果 | 第132-136页 |
| 3.2.1 动物分组 | 第132页 |
| 3.2.2 萃取部位药液制备及给药方式 | 第132-133页 |
| 3.2.3 对小鼠WBV的影响 | 第133页 |
| 3.2.4 对小鼠颌下腺AQP5的影响 | 第133-136页 |
| 4 小结与讨论 | 第136-143页 |
| 4.1 小结 | 第136-139页 |
| 4.1.1 醇提物对正常小鼠津液的影响 | 第136-137页 |
| 4.1.2 醇提物对模型大鼠津液的影响 | 第137-138页 |
| 4.1.3 各萃取部位对正常小鼠津液的影响 | 第138-139页 |
| 4.2 讨论 | 第139-143页 |
| 4.2.1 醇提物对正常小鼠津液的影响 | 第139-140页 |
| 4.2.2 醇提物对模型大鼠津液的影响 | 第140-141页 |
| 4.2.3 各萃取部位对全血黏度与AQP5的影响 | 第141-143页 |
| 第五章 凤眼片与枳壳片醇提物差异成分与AQP5的关联分析 | 第143-150页 |
| 1 正交偏最小二乘回归分析 | 第143-144页 |
| 1.1 实验材料 | 第143页 |
| 1.2 实验方法与结果 | 第143-144页 |
| 2 3',4',3,5,6,7,8-heptamethoxyflavone归属部位的确定 | 第144-147页 |
| 2.1 实验仪器材料 | 第144-145页 |
| 2.1.1 实验仪器 | 第144-145页 |
| 2.1.2 实验材料 | 第145页 |
| 2.2 实验方法与结果 | 第145-147页 |
| 2.2.1 样品的制备 | 第145页 |
| 2.2.2 供试品的配制 | 第145页 |
| 2.2.3 标准品溶液的制备 | 第145页 |
| 2.2.4 HPLC条件 | 第145-146页 |
| 2.2.5 操作步骤 | 第146页 |
| 2.2.6 实验结果 | 第146-147页 |
| 3 小结与讨论 | 第147-150页 |
| 3.1 小结 | 第147-148页 |
| 3.1.1 正交偏最小二乘回归分析 | 第147-148页 |
| 3.1.2 3',4',3,5,6,7,8-heptamethoxyflavone归属部位的确定 | 第148页 |
| 3.2 讨论 | 第148-150页 |
| 3.2.1 关联分析方法的选用 | 第148-149页 |
| 3.2.2 差异成分所属萃取部位的分析 | 第149-150页 |
| 第六章 各萃取部位及单体化合物对HSG细胞AQP5的影响 | 第150-167页 |
| 1 实验材料 | 第150-152页 |
| 1.1 细胞 | 第150页 |
| 1.2 药品与试剂 | 第150-151页 |
| 1.3 实验仪器 | 第151页 |
| 1.4 受试药物制备 | 第151-152页 |
| 2 实验方法及结果 | 第152-161页 |
| 2.1 实验方法 | 第152-153页 |
| 2.1.1 HSG细胞的培养及药物处理 | 第152页 |
| 2.1.2 PCR法检测药物对HSG细胞AQP5 mRNA表达的影响 | 第152-153页 |
| 2.1.3 Western blot检测药物对HSG细胞AQP5蛋白表达影响 | 第153页 |
| 2.2 实验结果 | 第153-161页 |
| 2.2.1 萃取部位干预HSG细胞最适浓度分析 | 第153页 |
| 2.2.2 萃取部位对HSG细胞AQP5 mRNA基因表达的影响 | 第153-154页 |
| 2.2.3 单体化合物对HSG细胞活度和AQP5 mRNA表达的影响 | 第154-160页 |
| 2.2.4 Western blot检测药物对HSG细胞AQP5蛋白表达水平 | 第160-161页 |
| 3 小结与讨论 | 第161-167页 |
| 3.1 小结 | 第161-162页 |
| 3.1.1 各萃取部位干预HSG细胞最适浓度 | 第161页 |
| 3.1.2 各萃取部位对AQP5 mRNA基因表达 | 第161-162页 |
| 3.1.3 部位B2和单体化合物3、12、13、14对AQP5 mRNA表达 | 第162页 |
| 3.1.4 单体化合物3、12与部位B2对AQP5蛋白表达 | 第162页 |
| 3.2 讨论 | 第162-167页 |
| 3.2.1 HSG细胞的选择 | 第162-164页 |
| 3.2.2 凤眼片炮制法缓燥原理 | 第164-167页 |
| 结语与创新 | 第167-170页 |
| 1 主要研究结论 | 第167-168页 |
| 2 主要创新点 | 第168页 |
| 3 展望 | 第168-170页 |
| 参考文献 | 第170-184页 |
| 附录 | 第184-187页 |
| 1 博士期间所发表论文 | 第184页 |
| 2 以往所发表论文 | 第184-186页 |
| 3 枳壳附图 | 第186-187页 |
| 致谢 | 第187页 |
