| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 英文缩略词 | 第11-12页 |
| 文献综述 抗肿瘤药物诱导分化机制研究进展 | 第12-16页 |
| 前言 | 第16-19页 |
| 第一部分 壁虎粗提液诱导分化的分子机制研究 | 第19-37页 |
| 1 材料和方法 | 第19-25页 |
| 1.1 实验材料 | 第19-21页 |
| 1.2 试验方法 | 第21-25页 |
| 1.2.1 技术路线 | 第21页 |
| 1.2.2 细胞培养 | 第21-22页 |
| 1.2.3 MTT法检测壁虎粗提液的增殖抑制作用 | 第22页 |
| 1.2.4 倒置显微镜法观察细胞形态变化 | 第22页 |
| 1.2.5 Giemsa染色观察细胞形态改变 | 第22页 |
| 1.2.6 蛋白质含量的测定 | 第22页 |
| 1.2.7 壁虎粗提液对Bel-7402细胞生化指标的影响 | 第22-23页 |
| 1.2.8 Western blot实验 | 第23-25页 |
| 2 结果 | 第25-34页 |
| 2.1 壁虎粗提液定量研究 | 第25页 |
| 2.2 形态观察 | 第25-28页 |
| 2.3 体外抑瘤活性检测(MTT法) | 第28-29页 |
| 2.4 生化指标 | 第29-30页 |
| 2.5 壁虎粗提液对细胞周期的影响 | 第30-31页 |
| 2.6 对MAPK信号通路的影响 | 第31-34页 |
| 3 讨论 | 第34-37页 |
| 第二部分 壁虎G25峰1组分诱导分化的分子机制研究 | 第37-48页 |
| 1 材料和方法 | 第37页 |
| 1.1 实验材料 | 第37页 |
| 1.2 试验方法 | 第37页 |
| 2 结果 | 第37-46页 |
| 2.1 壁虎G25峰1组分的定量研究 | 第37页 |
| 2.2 体外抑瘤活性检测(MTT法) | 第37-38页 |
| 2.3 形态观察 | 第38-39页 |
| 2.4 生化指标 | 第39-40页 |
| 2.5 壁虎G25峰1组分对Bel-7402细胞周期的影响 | 第40-41页 |
| 2.6 对MAPK信号通路的影响 | 第41-45页 |
| 2.7 对NF-κB表达的影响 | 第45-46页 |
| 3 讨论 | 第46-48页 |
| 第三部分 离子组分的体外抗肿瘤活性检测 | 第48-52页 |
| 1 材料和方法 | 第48页 |
| 1.1 实验材料 | 第48页 |
| 1.2 试验方法 | 第48页 |
| 2 结果 | 第48-51页 |
| 2.1 未冻干离子组分的体外活性检测 | 第48-49页 |
| 2.2 冻干离子组分的体外活性检测 | 第49-51页 |
| 3 讨论 | 第51-52页 |
| 第四部分 壁虎疏水组分(SS)诱导分化的分子机制研究 | 第52-60页 |
| 1 材料和方法 | 第52页 |
| 1.1 实验材料 | 第52页 |
| 1.2 试验方法 | 第52页 |
| 2 结果 | 第52-58页 |
| 2.1 SS定量研究 | 第52页 |
| 2.2 体外抑瘤活性检测(MTT法) | 第52-53页 |
| 2.3 形态观察 | 第53-55页 |
| 2.4 生化指标 | 第55页 |
| 2.5 对MAPK信号通路的影响 | 第55-58页 |
| 3 讨论 | 第58-60页 |
| 第五部分 从壁虎疏水组分中分离壁虎活性单体 | 第60-92页 |
| 1 材料和方法 | 第60页 |
| 1.1 实验材料 | 第60页 |
| 1.2 试验方法 | 第60页 |
| 1.2.1 体外增殖抑制作用(MTT法) | 第60页 |
| 1.2.2 倒置显微镜法观察细胞形态变化 | 第60页 |
| 2 结果 | 第60-91页 |
| 2.1 对从液相中按出峰时间不同分离到的①～⑤号组分进行体外活性检测 | 第60-68页 |
| 2.2 对上述效果好的④号组分进一步分离得到的1号～3号组分进行体外活性检测 | 第68-74页 |
| 2.3 进一步验证1号～3号活性及其各自除蛋白组分的活性 | 第74-81页 |
| 2.4 ①～⑤号、疏水、70℃和100℃疏水水浴组分的活性检测 | 第81-85页 |
| 2.5 冻干的①～⑤号液相组分活性检测 | 第85-91页 |
| 3 讨论 | 第91-92页 |
| 讨论 | 第92-93页 |
| 参考文献 | 第93-99页 |
| 致谢 | 第99-100页 |
| 个人简历 | 第100页 |
