| 摘要 | 第9-11页 |
| 第一章 论文综述 | 第11-17页 |
| 1 铅对神经系统的损伤 | 第11-13页 |
| 1.1 铅的吸收与代谢 | 第11页 |
| 1.2 铅对脑组织的影响 | 第11-13页 |
| 1.2.1 铅对神经系统发育过程的影响 | 第11-12页 |
| 1.2.2 铅对血脑屏障的影响 | 第12页 |
| 1.2.3 铅对神经元细胞能量代谢的影响 | 第12页 |
| 1.2.4 铅对神经元细胞凋亡的影响 | 第12-13页 |
| 1.2.5 铅对突触体的影响 | 第13页 |
| 2 脑组织中的胰岛素及其信号转导通路 | 第13-14页 |
| 3 脑组织葡萄糖代谢 | 第14-15页 |
| 4 研究目的与意义 | 第15-16页 |
| 5 技术路线 | 第16-17页 |
| 第二章 铅对大鼠脑组织中铅、钙、锌、镁、铁、锰、铜元素的影响 | 第17-22页 |
| 1 材料与方法 | 第17-18页 |
| 1.1 试验材料 | 第17页 |
| 1.1.1 试验动物 | 第17页 |
| 1.1.2 试验主要试剂 | 第17页 |
| 1.1.3 主要仪器 | 第17页 |
| 1.2 试验方法 | 第17-18页 |
| 1.2.1 动物模型的建立 | 第17-18页 |
| 1.2.2 样品的采集 | 第18页 |
| 1.2.3 脑组织中铅、钙、锌、镁、铁、锰、铜含量的测定 | 第18页 |
| 1.3 统计分析 | 第18页 |
| 2 结果与分析 | 第18-20页 |
| 2.1 铅对大鼠体重的影响 | 第18-19页 |
| 2.2 铅对大鼠脑组织铅、钙、锌、镁、铁、锰、铜元素含量的影响 | 第19-20页 |
| 3 讨论 | 第20-21页 |
| 4 小结 | 第21-22页 |
| 第三章 铅对大鼠脑组织神经元细胞凋亡的影响 | 第22-28页 |
| 1 材料与方法 | 第22-25页 |
| 1.1 试验材料 | 第22页 |
| 1.1.1 试验动物 | 第22页 |
| 1.1.2 试验主要试剂 | 第22页 |
| 1.1.3 主要仪器 | 第22页 |
| 1.2 试验方法 | 第22-25页 |
| 1.2.1 动物模型的建立 | 第22页 |
| 1.2.2 样品的采集 | 第22-23页 |
| 1.2.3 脑组织石蜡切片的制备 | 第23页 |
| 1.2.4 TUNEL荧光染色 | 第23-25页 |
| 2 结果与分析 | 第25-27页 |
| 2.1 铅对大鼠海马神经元细胞凋亡的影响 | 第25-26页 |
| 2.2 铅对大鼠皮质神经元细胞凋亡的影响 | 第26-27页 |
| 3 讨论 | 第27页 |
| 4 小结 | 第27-28页 |
| 第四章 铅对大鼠脑组织中糖代谢相关酶的影响 | 第28-32页 |
| 1 材料与方法 | 第28-29页 |
| 1.1 试验材料 | 第28-29页 |
| 1.1.1 试验动物 | 第28页 |
| 1.1.2 试验主要试剂 | 第28页 |
| 1.1.3 主要仪器 | 第28-29页 |
| 1.2 试验方法 | 第29页 |
| 1.2.1 动物模型的建立 | 第29页 |
| 1.2.2 样品的采集 | 第29页 |
| 1.2.3 脑组织中HK、PFK、PK酶活力及G-6-Pase含量的测定 | 第29页 |
| 1.3 统计分析 | 第29页 |
| 2 结果与分析 | 第29-30页 |
| 3 讨论 | 第30-31页 |
| 4 小结 | 第31-32页 |
| 第五章 铅对大鼠脑组织胰岛素信号通路及葡萄糖转运蛋白基因表达的影响 | 第32-41页 |
| 1 材料与方法 | 第32-36页 |
| 1.1 试验材料 | 第32-33页 |
| 1.1.1 试验动物 | 第32页 |
| 1.1.2 试验主要试剂 | 第32页 |
| 1.1.3 主要仪器 | 第32-33页 |
| 1.2 试验方法 | 第33-35页 |
| 1.2.1 动物模型的建立 | 第33页 |
| 1.2.2 样品的采集 | 第33页 |
| 1.2.3 大鼠脑组织海马及皮质总RNA的提取 | 第33页 |
| 1.2.4 总RNA的检测 | 第33页 |
| 1.2.5 反转录反应 | 第33-34页 |
| 1.2.5.1 反应体系 | 第33-34页 |
| 1.2.5.2 反应条件 | 第34页 |
| 1.2.6 荧光定量RT-PCR引物的设计 | 第34-35页 |
| 1.2.7 荧光定量RT-PCR反应 | 第35页 |
| 1.2.7.1 反应体系 | 第35页 |
| 1.2.7.2 反应条件 | 第35页 |
| 1.2.8 标准曲线的制作 | 第35页 |
| 1.2.9 荧光定量RT-PCR产物的检测 | 第35页 |
| 1.2.10 数据收集处理和分析 | 第35页 |
| 1.3 统计分析 | 第35-36页 |
| 2 结果与分析 | 第36-39页 |
| 2.1 总RNA纯度及质量的检测 | 第36页 |
| 2.2 海马与皮质中目的与内参基因mRNA标准曲线的建立及回归方程的设定 | 第36页 |
| 2.3 铅对大鼠脑组织海马Insr、Irs1、PI3K、Akt2、mTOR、GLUT-1和GLUT-3 mRNA表达量的影响 | 第36-38页 |
| 2.4 铅对大鼠脑组织皮质Insr、Irs1、PI3K、Akt2、mTOR、GLUT-1和GLUT-3 mRNA表达量的影响 | 第38-39页 |
| 3 讨论 | 第39-40页 |
| 4 小结 | 第40-41页 |
| 第六章 铅对大鼠海马中葡萄糖转运蛋白表达的影响 | 第41-46页 |
| 1 材料与方法 | 第41-44页 |
| 1.1 试验材料 | 第41-42页 |
| 1.1.1 试验动物 | 第41页 |
| 1.1.2 试验主要试剂 | 第41页 |
| 1.1.3 主要仪器 | 第41-42页 |
| 1.2 试验方法 | 第42-43页 |
| 1.2.1 动物模型的建立 | 第42页 |
| 1.2.2 样品的采集 | 第42页 |
| 1.2.3 试剂的配制 | 第42页 |
| 1.2.4 Western-blot | 第42-43页 |
| 1.2.4.1 海马组织总蛋白提取 | 第42页 |
| 1.2.4.2 蛋白浓度的测定 | 第42-43页 |
| 1.2.4.3 样品处理 | 第43页 |
| 1.2.4.4 SDS-PAGE电泳 | 第43页 |
| 1.2.4.5 样品蛋白检测 | 第43页 |
| 1.2.4.6 转膜 | 第43页 |
| 1.2.4.7 封闭与杂交 | 第43页 |
| 1.2.4.8 化学发光及图像分析 | 第43页 |
| 1.3 统计分析 | 第43-44页 |
| 2 结果与分析 | 第44页 |
| 3 讨论 | 第44-45页 |
| 4 小结 | 第45-46页 |
| 全文结论 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-51页 |
| Abstract | 第51-52页 |
| 致谢 | 第53页 |
