| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 英文缩写词表 | 第7-11页 |
| 第一章 绪论 | 第11-24页 |
| 1.1 低温胁迫对植物的损害 | 第11-14页 |
| 1.1.1 冰晶体形成与危害 | 第12页 |
| 1.1.2 ROS形成与危害 | 第12-13页 |
| 1.1.3 低温对蛋白质的影响 | 第13页 |
| 1.1.4 低温对生殖阶段植物的影响 | 第13-14页 |
| 1.1.5 低温对植物营养生长和生殖生长的影响 | 第14页 |
| 1.2 植物对低温胁迫的响应 | 第14-21页 |
| 1.2.1 低温信号识别与传导 | 第16-18页 |
| 1.2.2 CBF/DREB途径 | 第18-20页 |
| 1.2.3 其他低温胁迫响应 | 第20-21页 |
| 1.3 未知功能基因的研究策略 | 第21页 |
| 1.4 本课题的目的与意义 | 第21-24页 |
| 1.4.1 高山离子芥研究概况 | 第21-22页 |
| 1.4.2 目的与意义 | 第22-24页 |
| 第二章 材料与方法 | 第24-29页 |
| 2.1 材料 | 第24页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第24页 |
| 2.1.2 载体与菌株 | 第24页 |
| 2.2 实验方法 | 第24-29页 |
| 2.2.1 植物材料处理 | 第24-25页 |
| 2.2.2 载体构建 | 第25页 |
| 2.2.3 荧光定量PCR | 第25页 |
| 2.2.4 胁迫处理下CbF2H蛋白Western-blot实验 | 第25-26页 |
| 2.2.5 CbF2H蛋白亚细胞定位 | 第26-27页 |
| 2.2.6 AtF2H蛋白组织定位 | 第27页 |
| 2.2.7 拟南芥AtF2H基因T-DNA插入突变纯合体筛选 | 第27页 |
| 2.2.8 低温胁迫下拟南芥存活率和生理指标测定 | 第27-29页 |
| 第三章 高山离子芥CbF2H基因功能分析 | 第29-38页 |
| 3.1 CbF2H基因由一个外显子组成 | 第29页 |
| 3.2 CbF2H基因在转录水平上变化情况 | 第29-32页 |
| 3.2.1 低温胁迫下CbF2H基因在转录水平上上调表达 | 第29-31页 |
| 3.2.2 NaCl胁迫下CbF2H基因在转录水平上上调表达 | 第31-32页 |
| 3.3 CbF2H基因在翻译水平上变化情况 | 第32-35页 |
| 3.3.1 CbF2H蛋白诱导纯化及抗体制备 | 第32-33页 |
| 3.3.2 胁迫条件下CbF2H基因在翻译水平上变化情况 | 第33-35页 |
| 3.4 CbF2H基因亚细胞初步定位于细胞膜和细胞核上 | 第35-38页 |
| 3.4.1 CbF2H基因瞬时表达亚细胞定位 | 第35-36页 |
| 3.4.2 CbF2H基因稳定遗传表达亚细胞定位 | 第36-38页 |
| 第四章 拟南芥AtF2H基因功能分析 | 第38-48页 |
| 4.1 AtF2H蛋白在拟南芥个各时期和各组织均有表达 | 第38-40页 |
| 4.2 拟南芥AtF2H基因插入突变体和野生型植株差异研究 | 第40-48页 |
| 4.2.1 AtF2H基因T-DNA插入突变纯合体筛选 | 第40-41页 |
| 4.2.2 拟南芥AtF2H基因插入突变体和野生型种子萌发率无明显差异 | 第41页 |
| 4.2.3 拟南芥AtF2H基因插入突变体和野生型相比提前进入生殖生长阶段 | 第41-43页 |
| 4.2.4 拟南芥AtF2H基因插入突变体和野生型对比抗低温能力下降 | 第43-48页 |
| 第五章 讨论与展望 | 第48-52页 |
| 5.1 高山离子芥CbF2H蛋白初步定位于细胞膜和细胞核上 | 第48页 |
| 5.2 胁迫处理可能使CbF2H蛋白先降解后诱导其在转录水平上上调表达 | 第48-49页 |
| 5.3 拟南芥AtF2H基因在拟南芥各生长阶段和各组织中均有表达 | 第49-50页 |
| 5.4 AtF2H基因可能参与改变拟南芥生长阶段的过程 | 第50页 |
| 5.5 AtF2H基因缺失可能导致拟南芥植株抗低温能力下降 | 第50-52页 |
| 参考文献 | 第52-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
