| 摘要 | 第3-7页 |
| ABSTRACT | 第7-10页 |
| 1 前言 | 第13-20页 |
| 2 材料 | 第20-25页 |
| 2.1 实验动物 | 第20页 |
| 2.2 药物 | 第20页 |
| 2.3 主要实验试剂 | 第20-22页 |
| 2.4 主要仪器设备 | 第22-23页 |
| 2.5 主要试剂配制 | 第23-25页 |
| 3 实验方法和步骤 | 第25-35页 |
| 3.1 动物模型与分组 | 第25页 |
| 3.2 剂量设定与分组给药 | 第25页 |
| 3.3 标本收集和处理 | 第25-26页 |
| 3.4 观察指标和测定方法 | 第26页 |
| 3.5 小鼠肾脏组织HE染色 | 第26-27页 |
| 3.6 小鼠肾脏Masson染色 | 第27-28页 |
| 3.7 免疫组化观察组织内α-SMA,VE-cadherin,Vimentin表达量 | 第28-29页 |
| 3.8 WB检测α-SMA,VE-cadherin,Vimentin在组织中表达 | 第29-32页 |
| 3.9 RT-PCR检测组织内Wnt1、β-catenin、P-GSK-3β表达情况 | 第32-34页 |
| 3.10 统计学方法 | 第34-35页 |
| 4 结果 | 第35-46页 |
| 4.1 一般情况观察 | 第35页 |
| 4.2 不同时期小鼠血糖的变化 | 第35-36页 |
| 4.3 24h尿蛋白及肾功能检测 | 第36-37页 |
| 4.4 肾脏组织病理学改变 | 第37-40页 |
| 4.5 肾康丸对DN小鼠EndMT标记物α-SMA,E-cadherin,Vimentin表达水平的影响 | 第40-42页 |
| 4.6 Western Blot检测EndMT标记物α-SMA,VE-cadherin,Vimentin的蛋白表达 | 第42-44页 |
| 4.7 RT-PCR检测肾脏组织中Wnt1、β-catenin、P-GSK-3β等mRNA的表达水平 | 第44-45页 |
| 4.8 WB检测各组小鼠组织中Wnt1、β-catenin、P-GSK-3β蛋白表达情况: | 第45-46页 |
| 5 讨论 | 第46-54页 |
| 5.1 小鼠模型的选择 | 第46-47页 |
| 5.2 阳性药物选择以及与肾康丸的对比 | 第47页 |
| 5.3 肾康丸组方依据 | 第47-48页 |
| 5.4 肾康丸对DN小鼠血生化和肾功能的作用 | 第48-49页 |
| 5.5 肾康丸对DN小鼠肾脏组织形态的影响 | 第49页 |
| 5.6 肾康丸对DN的EndMT以及相关机制通路的分析 | 第49-54页 |
| 6 结论 | 第54-56页 |
| 参考文献 | 第56-62页 |
| 综述 | 第62-70页 |
| 参考文献 | 第68-70页 |
| 缩写词对照表 | 第70-71页 |
| 攻读学位期间成果 | 第71-72页 |
| 致谢 | 第72-74页 |
